研究者詳細

顔写真

ヨコイ　ハヤト
横井　勇人
Hayato Yokoi
所属
大学院農学研究科　生物生産科学専攻　水圏生産科学講座（海洋生命遺伝情報学分野）
職名
教授
学位

  • 博士（理学） （名古屋大学）

e-Rad 研究者番号
40569729

委員歴 5

  • 日本動物学会　国際交流委員会

    2024年7月 ～ 継続中

  • 日本動物学会 東北支部　支部委員

    2019年3月 ～ 継続中

  • 日本水産学会　東北支部 支部連絡調整員

    2021年4月 ～ 2022年3月

  • 日本水産学会　東北支部 支部連絡調整員

    2016年4月 ～ 2018年3月

  • 日本水産学会　東北支部 編集担当委員

    2010年4月 ～ 2012年3月

所属学協会 4

  • 日本動物学会

  • 日本水産学会

  • The International Society of Developmental Biologists

  • 日本発生生物学会

研究キーワード 4

  • ゲノム

  • 進化

  • 発生工学

  • 変態

研究分野 1

  • ライフサイエンス / 水圏生産科学 /

受賞 1

  1. Zebrafish Meeting Best Poster Award

    2004年8月　6th International Conference on Zebrafish Development & Genetics　Poster presentation: Analysis of a medaka mutant headfish, defective in trunk and tail development.

論文 49

  1. A genetic model of congenital intestinal atresia implicates Mypt1 in epithelial organisation. 国際誌 査読有り

    Daisuke Kobayashi, Akihiro Urasaki, Tetsuaki Kimura, Satoshi Ansai, Kazuhiko Matsuo, Hayato Yokoi, Shigeo Takashima, Tadao Kitagawa, Takahiro Kage, Takanori Narita, Tomoko Jindo, Masato Kinoshita, Kiyoshi Naruse, Yoshiro Nakajima, Masaki Shigeta, Shinichiro Sakaki, Satoshi Inoue, Rie Saba, Kei Yamada, Takahiko Yokoyama, Yuji Ishikawa, Kazuo Araki, Yumiko Saga, Hiroyuki Takeda, Kenta Yashiro

    Disease Models & Mechanisms　19　(2)　2026年2月1日

    DOI： 10.1242/dmm.052605 　

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    Congenital intestinal atresia (IA) is a birth defect characterised by the absence or closure of part of the intestine. Although genetic factors are implicated, mechanistic understanding has been hindered by the lack of suitable animal models. Here, we describe a medaka (Oryzias latipes) mutant, generated by N-ethyl-N-nitrosourea (ENU) mutagenesis, that develops IA during embryogenesis. Positional cloning identified a nonsense mutation in mypt1, encoding myosin phosphatase target subunit 1. Mutant embryos exhibited ectopic accumulation of F-actin and phosphorylated myosin regulatory light chain (Mrlc) in the intestinal epithelium, consistent with disrupted actomyosin regulation. These cytoskeletal abnormalities were accompanied by epithelial disorganisation, without notable alterations in cell proliferation, motility or apoptosis. Inhibition of myh11a, encoding smooth muscle (SM) myosin heavy chain, ameliorated the IA phenotype, whereas blebbistatin treatment completely rescued the defect, suggesting a non-contractile role prior to SM maturation. Together, these findings demonstrate that mypt1 loss disrupts intestinal morphogenesis through actomyosin dysregulation. Given the recent clinical identification of IA associated with MYPT1 variants, this medaka model offers a valuable platform to investigate the developmental and molecular basis of MYPT1-associated IA in humans.

  2. Simple Transgene Overexpression using Scallop Hemocyte Culture Platform Enables Functional Genetic Research in Molluscs. 国際誌 査読有り

    Jeongwoong Yoon, Taro Tsuda, Enrico Bortoletto, Akari Sakaguchi, Mutsuko Kobayashi, Umberto Rosani, Hayato Yokoi, Makoto Osada, Paola Venier, Kazue Nagasawa

    Marine Biotechnology (New York, N.Y.)　27　(3)　94-94　2025年6月11日

    DOI： 10.1007/s10126-025-10472-7 　

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    Despite being evolutionarily and commercially important, molluscs have been a traditionally challenging group to study, due to their difficulty in maintenance under lab conditions and the lack of a genetic toolkit. Previously, we showed that transgene expression can be attained in molluscan cells with reporter genes under a molluscan virus promoter sequence. Following up, we developed a simple, efficient and rapid transgene expression platform using primary hemocyte culture of Farrer's scallop Chlamys farreri, a marine bivalve mollusc. The protocol consists of two steps: collection and seeding of hemocytes and incubation for 1 to 4 days with DNA-reagent mixture. We evaluated seven transfection reagents for three bivalve species and found that X-tremeGENE 360 was highly efficient for DNA transfection, particularly for C. farreri. Subsequently, C. farreri hemocyte culture and transfection conditions were examined, such as culture medium, size and form of DNA, and the mixing ratio of DNA and transfection reagent. Using this protocol, we visualized the subcellular localization of four bivalve oncogenes, Cf-Mdm2-like, Cf-c-Myc-like, Cf-Mortalin-like, and Cf-Ras-like, tagged with EGFP. Our hemocyte platform provides an easy entry to study cellular and molecular biology of molluscs and can be readily adapted for advanced methods such as live imaging and DNA-protein interaction assays, making the study of molluscs more accessible to the scientific community.

  3. Vitellogenin uptake activity in the intestinal ducts of intraovarian embryos in a viviparous teleost Xenotoca eiseni 国際誌 査読有り

    Jumpei Nomura, Hayato Yokoi, Eiichi Hondo, Atsuo Iida

    Biochemical and Biophysical Research Communications　644　79-84　2023年1月

    DOI： 10.1016/j.bbrc.2023.01.009 　

  4. Gene delivery available in molluscan cells by strong promoter discovered from bivalve-infectious virus. 国際誌 査読有り

    Jeongwoong Yoon, Wen-Bin Gu, Mizuki Konuma, Mutsuko Kobayashi, Hayato Yokoi, Makoto Osada, Kazue Nagasawa

    Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America　119　(45)　e2209910119　2022年11月8日

    DOI： 10.1073/pnas.2209910119 　

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    Understanding gene functions in marine invertebrates has been limited, largely due to the lack of suitable assay systems. Such a system requires investigative methods that are reproducible and can be quantitatively evaluated, such as a cell line, and a strong promoter that can drive high expression of a transgene. In this study, we established primary cell culture from a marine bivalve mollusc, Mizuhopecten yessoensis. Using scallop primary cells, we optimized electroporation conditions for transfection and carried out a luciferase-based promoter activity assay to identify strong promoter sequences that can drive expression of a gene of interest. We evaluated potential promoter sequences from genes of endogenous and exogenous origin and discovered a strong viral promoter derived from a bivalve-infectious virus, ostreid herpesvirus-1 (OsHV-1). This promoter, we termed OsHV-1 promoter, showed 24.7-fold and 16.1-fold higher activity than the cytomegalovirus immediate early (CMV IE) promoter and the endogenous EF1α promoter, the two most commonly used promoters in bivalves so far. Our GFP assays showed that the OsHV-1 promoter is active not only in scallop cells but also in HEK293 cells and zebrafish embryos. The OsHV-1 promoter practically enables functional analysis of marine molluscan genes, which can contribute to unveiling gene-regulatory networks underlying astonishing regeneration, adaptation, reproduction, and aging in marine invertebrates.

  5. Endocytosis-mediated vitellogenin absorption and lipid metabolism in the hindgut-derived placenta of the viviparous teleost Xenotoca eiseni 国際誌 査読有り

    Atsuo Iida, Jumpei Nomura, Junki Yoshida, Takayuki Suzuki, Hayato Yokoi, Eiichi Hondo

    Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular and Cell Biology of Lipids　1867　(9)　159183-159183　2022年9月

    出版者・発行元： Elsevier BV

    DOI： 10.1016/j.bbalip.2022.159183 　

    ISSN：1388-1981

  6. Myosin phosphatase target subunit 1governs integrity of the embryonic gut epithelium to circumvent atresia development in medaka,Oryzias latipes

    Daisuke Kobayashi, Kazuhiko Matsuo, Tetsuaki Kimura, Satoshi Ansai, Hayato Yokoi, Shigeo Takashima, Tadao Kitagawa, Takahiro Kage, Takanori Narita, Tomoko Jindo, Masato Kinoshita, Kiyoshi Naruse, Yoshiro Nakajima, Masaki Shigeta, Shinichiro Sakaki, Satoshi Inoue, Rie Saba, Kei Yamada, Takahiko Yokoyama, Yuji Ishikawa, Kazuo Araki, Yumiko Saga, Hiroyuki Takeda, Kenta Yashiro

    2021年12月11日

    出版者・発行元： Cold Spring Harbor Laboratory

    DOI： 10.1101/2021.12.10.472183 　

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    Abstract Background Intestinal atresia (IA) is a congenital gut obstruction caused by the absence of gut opening. Genetic factors are assumed to be critical for the development of IA, in addition to accidental vascular insufficiency or mechanical strangulation. However, the molecular mechanism underlying IA remains poorly understood. Results In this study, to better understand such a mechanism, we isolated a mutant ofOryzias latipes(the Japanese rice fish known as medaka) generated by N-ethyl-N-nitrosourea mutagenesis, in which IA develops during embryogenesis. Positional cloning identified a nonsense mutation in themyosin phosphatase target subunit 1(mypt1) gene. Consistent with known Mypt1 function, the active form of myosin regulatory light chain (MRLC), which is essential for actomyosin contraction, and F-actin were ectopically accumulated in the intestinal epithelium of mutant embryos, whereas cell motility, proliferation and cell death were not substantially affected. Corresponding to the accumulation site of F-actin/active MRLC, the intestinal epithelium architecture was disordered. Importantly, blebbistatin, a non-muscle myosin inhibitor, attenuated the development of IA in the mutant. Conclusions Cytoskeletal contraction governed bymypt1regulates the integrity of the embryonic intestinal epithelium. This study provides new insight into our understanding of the mechanism of IA development in humans. Bullet Points Medakamypt1mutants display intestinal atresia. The level of phosphorylated myosin regulatory light chain was higher inmypt1mutant embryos than inwild-typeembryos. The levels of F-actin appeared elevated in the intestinal epithelium ofmypt1mutants. Blebbistatin, an inhibitor of non-muscle myosin II, rescued intestinal atresia inmypt1mutant embryos.

  7. Visualization of Sox10‐positive chromatoblasts by GFP fluorescence in flounder larvae and juveniles using electroporation 査読有り

    Minato Miyake, Michiharu Sekine, Tohru Suzuki, Hayato Yokoi

    Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution　2021年4月26日

    出版者・発行元： Wiley

    DOI： 10.1002/jez.b.23045 　

    ISSN：1552-5007

    eISSN：1552-5015

  8. Delivery of exogenous proteins into eggs by injection into the mother's ovary (IMO) in zebrafish. 国際誌 査読有り

    Masaki Iwaizumi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Fish Physiology and Biochemistry　47　(4)　849-855　2021年3月20日

    DOI： 10.1007/s10695-021-00945-6 　

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    Genome editing has had profound effects on biological experimentation and can now be applied to many organisms, including non-conventional models. However, the introduction of genome editing components is time- and labor-consuming and sometimes requires special skills for microinjection. In this study, we developed a technique to deliver exogenous proteins into eggs by injection into the mother's ovary (IMO), which leads to the delivery of CRISPR/Cas9 into the eggs of oviparous animals, including fish. To test this technique, we examined whether exogenous proteins tagged with GFP or luciferase (Luc), and fluorescent-labeled RNP (Cas9 and sgRNA complex), can be delivered into eggs by IMO. When GFP-Luc or Cas9-Luc was delivered by IMO, their incorporation into fertilized eggs was confirmed by GFP fluorescence or luciferase activity; proteins were accumulated in the yolk. Cas9-RNP (targeting tyrosinase) was also incorporated into the eggs. However, genome editing of the target gene, tyrosinase, was not observed yet. This is presumably because the RNP delivered by IMO was packed in the yolk granules and did not reach into the embryonic nuclei. Thus, this report shows that exogenous molecules including Cas9-RNP were successfully delivered into fertilized eggs by IMO. Transferring the delivered RNP into nuclei will be critical for successful genome editing via the IMO delivery system.

  9. Development of the anterior lateral line system through local tissue-tissue interactions in the zebrafish head. 国際誌 査読有り

    Miki Iwasaki, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki, Koichi Kawakami, Hironori Wada

    Developmental Dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists　249　(12)　1440-1454　2020年12月

    DOI： 10.1002/dvdy.225 　

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    BACKGROUND: The distribution of sensory organs is important for detecting environmental signals efficiently. The mechanosensory receptors of the lateral line system, neuromasts, are stereotypically distributed over the head and body surface of fish, although how neuromasts arise in these predetermined positions during development remains unclear. RESULTS: We investigated the development of the anterior lateral line (ALL) system in zebrafish head. The ALL neuromasts formed in the predetermined positions through proliferation and differentiation of (a) nonmigratory lateral line primordia, (b) migratory primordia, (c) interneuromast cells connecting preexisting neuromasts, and (d) budding primordia. We demonstrated that R-spondin2 (Rspo2), an activator of Wnt/β-catenin signaling, is required for the development of a particular set of neuromasts associated with hyomandibular cartilage. Further genetic analyses suggested that Rspo2, which emanates from the hyoid mesenchyme, acts on the adjacent neuromast progenitor cells to stimulate their proliferation through activating Wnt/β-catenin signaling. CONCLUSION: This study has revealed novel mechanisms for neuromast positioning through local tissue-tissue interactions, providing insights into the development and evolution of the vertebrate head.

  10. Plasmid delivery by electroporation into fish skeletal muscle for recombinant protein secretion and uptake by oocytes 国際誌 査読有り

    Masaki Iwaizumi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Fish Physiology and Biochemistry　46　(3)　1121-1130　2020年6月

    出版者・発行元： Springer Science and Business Media LLC

    DOI： 10.1007/s10695-020-00775-y 　

    ISSN：0920-1742

    eISSN：1573-5168

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    We examined the efficiency of electroporation for the delivery of plasmid into the skeletal muscle and also examined the subsequent secretion of recombinant protein into the circulation system, using zebrafish, Japanese flounder, and bubble-eye goldfish. The expression area of GFP fluorescence was markedly expanded by electroporation. Introduced plasmid was retained in the muscle cells and continued to express GFP for at least 180 days in zebrafish, indicating the long lifespan of plasmid DNA in the muscle cell. Luciferase and a fusion of growth hormone (GH) and luciferase were secreted into the blood from muscle electroporated with CMV:secNluc and CMV:GH-Luc plasmids, respectively, indicating that recombinant proteins such as peptide hormones can be supplied to the blood by plasmid electroporation into muscle. Interestingly, luciferase activity was detected from fertilized eggs laid by zebrafish females that had been electroporated with CMV:secNluc, indicating that maturing oocytes incorporated recombinant protein from the blood stream that had been secreted from the muscle. The plasmid electroporation system reported here also may work for the delivery of recombinant proteins, such as Cas9, into the oocytes. Since the GH-Luc fusion protein was detected in the lymph of the eye-sac of bubble-eye goldfish, this fish may be useful for the production of recombinant protein.

  11. Developmental regulatory system of ocular‐side‐specific asymmetric pigmentation in flounder: Critical role of retinoic acid signaling 国際誌 査読有り

    Qiran Chen, Kota Sato, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution　334　(3)　156-167　2020年5月

    出版者・発行元： Wiley

    DOI： 10.1002/jez.b.22934 　

    ISSN：1552-5007

    eISSN：1552-5015

  12. Mother-to-embryo vitellogenin transport in a viviparous teleost Xenotoca eiseni. 国際誌 査読有り

    Atsuo Iida, Hiroyuki N Arai, Yumiko Someya, Mayu Inokuchi, Takeshi A Onuma, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki, Eiichi Hondo, Kaori Sano

    Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America　116　(44)　22359-22365　2019年10月29日

    DOI： 10.1073/pnas.1913012116 　

    ISSN：0027-8424

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    Vitellogenin (Vtg), a yolk nutrient protein that is synthesized in the livers of female animals, and subsequently carried into the ovary, contributes to vitellogenesis in oviparous animals. Thus, Vtg levels are elevated during oogenesis. In contrast, Vtg proteins have been genetically lost in viviparous mammals, thus the yolk protein is not involved in their oogenesis and embryonic development. In this study, we identified Vtg protein in the livers of females during the gestation of the viviparous teleost, Xenotoca eiseni Although vitellogenesis is arrested during gestation, biochemical assays revealed that Vtg protein was present in ovarian tissues and lumen fluid. The Vtg protein was also detected in the trophotaeniae of the intraovarian embryo. Immunoelectron microscopy revealed that Vtg protein is absorbed into intracellular vesicles in the epithelial cells of the trophotaeniae. Furthermore, extraneous Vtg protein injected into the abdominal cavity of a pregnant female was subsequently detected in the trophotaeniae of the intraovarian embryo. Our data suggest that the yolk protein is one of the matrotrophic factors supplied from the mother to the intraovarian embryo during gestation in X. eiseni.

  13. Identification of Sox10-positive cells at the dorsal fin base of juvenile flounder that are correlated with blind-side skin ectopic pigmentation 国際誌 査読有り

    Mai Togawa, Yuna Endo, Nobuo Suzuki, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution　330　(8)　427-437　2018年12月

    DOI： 10.1002/jez.b.22842 　

    ISSN：1552-5007

    eISSN：1552-5015

  14. Expression profiles of RA synthases and catabolic enzymes in newly hatched and metamorphosing larvae of Japanese flounder, Paralichthys olivaceus 国際誌 査読有り

    Qiran Chen, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    General and Comparative Endocrinology　269　60-67　2018年12月

    出版者・発行元： Elsevier BV

    DOI： 10.1016/j.ygcen.2018.08.015 　

    ISSN：0016-6480

  15. External Asymmetry and Pectoral Fin Loss in the Bamboo Sole (Heteromycteris japonica): Small-Sized Sole with Potential as a Pleuronectiformes Experimental Model 国際誌 査読有り

    Qiran Chen, Masako Takagi, Makoto Mogi, Miki Kikuchi, Yudai Saito, Shunya Nakamura, Hayato Yokoi, Tadahisa Seikai, Susumu Uji, Tohru Suzuki

    Zoological Science　34　(5)　377-385　2017年10月

    DOI： 10.2108/zs170021 　

    ISSN：0289-0003

  16. Analyses of the cellular clock gene expression in peripheral tissue, caudal fin, in the Japanese flounder, Paralichthys olivaceus 国際誌 査読有り

    Makoto Mogi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    General and Comparative Endocrinology　248　97-105　2017年7月

    DOI： 10.1016/j.ygcen.2017.02.009 　

    ISSN：0016-6480

    eISSN：1095-6840

  17. Excess Retinoic Acid Induces Fusion of Centra by Degenerating Intervertebral Ligament Cells in Japanese flounder, Paralichthys olivaceus 国際誌 査読有り

    Xiaoming Wu, Qiran Chen, Youhei Washio, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution　326　(8)　464-473　2016年12月

    DOI： 10.1002/jez.b.22717 　

    ISSN：1552-5007

    eISSN：1552-5015

  18. Role of notochord cells and sclerotome-derived cells in vertebral column development in fugu, Takifugu rubripes: histological and gene expression analyses 国際誌 査読有り

    Takamasa Kaneko, Khalid Freeha, Xiaoming Wu, Makoto Mogi, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Cell and Tissue Research　366　(1)　37-49　2016年10月

    DOI： 10.1007/s00441-016-2404-z 　

    ISSN：0302-766X

    eISSN：1432-0878

  19. Diethylnitrosamine-induced expression of germline-specific genes and pluripotency factors, including vasa and oct4, in medaka somatic cells 国際誌 査読有り

    Jialing Shen, Shinpei Yokota, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Biochemical and Biophysical Research Communications　478　(2)　858-863　2016年9月

    DOI： 10.1016/j.bbrc.2016.08.039 　

    ISSN：0006-291X

    eISSN：1090-2104

  20. Establishment of oct4:egfp transgenic and oct4:egfp/beta-actin:DsRed double transgenic medaka lines 国際誌 査読有り

    Shinpei Yokota, Rinta Matsuno, Hiroyuki Kato, Hisashi Hashimoto, Masato Kinoshita, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    In Vitro Cellular & Developmental Biology-Animal　52　(6)　646-653　2016年6月

    DOI： 10.1007/s11626-016-0020-6 　

    ISSN：1071-2690

    eISSN：1543-706X

  21. Transcriptome analysis of vertebral bone in the flounder, Paralichthys olivaceus (Teleostei, Pleuronectiformes), using Illumina sequencing 国際誌 査読有り

    Harumi Ibaraki, Xiaoming Wu, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Yoshifurni Sakai, Tohru Suzuki

    Marine Genomics　24　269-276　2015年12月

    DOI： 10.1016/j.margen.2015.09.009 　

    ISSN：1874-7787

    eISSN：1876-7478

  22. Early development of circadian rhythmicity in the suprachiamatic nuclei and pineal gland of teleost, flounder (Paralichthys olivaeus), embryos 国際誌 査読有り

    Makoto Mogi, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Development Growth & Differentiation　57　(6)　444-452　2015年8月

    DOI： 10.1111/dgd.12222 　

    ISSN：0012-1592

    eISSN：1440-169X

  23. Establishment of oct4:gfp transgenic zebrafish line for monitoring cellular multipotency by GFP fluorescence 国際誌 査読有り

    Hiroyuki Kato, Kota Abe, Shinpei Yokota, Rinta Matsuno, Tsuyoshi Mikekado, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    In Vitro Cellular & Developmental Biology-Animal　51　(1)　42-49　2015年1月

    DOI： 10.1007/s11626-014-9805-7 　

    ISSN：1071-2690

    eISSN：1543-706X

  24. Exposure to oxidative by-products during metamorphosis affects pigmentation patterns in flounder, Paralichthys olivaceus 国際誌 査読有り

    Youhei Washio, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Aquaculture　435　318-327　2015年1月

    DOI： 10.1016/j.aquaculture.2014.10.015 　

    ISSN：0044-8486

    eISSN：1873-5622

  25. No Evidence for AID/MBD4-Coupled DNA Demethylation in Zebrafish Embryos 国際誌 査読有り

    Nobuyoshi Shimoda, Kentaro Hirose, Reiya Kaneto, Toshiaki Izawa, Hayato Yokoi, Naohiro Hashimoto, Yutaka Kikuchi

    PLOS ONE　9　(12)　e114816-e114816　2014年12月

    DOI： 10.1371/journal.pone.0114816 　

    ISSN：1932-6203

  26. TALEN-mediated mutagenesis in zebrafish reveals a role for r-spondin 2 in fin ray and vertebral development 国際誌 査読有り

    Yoshiaki Tatsumi, Moe Takeda, Masaru Matsuda, Tohru Suzuki, Hayato Yokoi

    FEBS Letters　588　(24)　4543-4550　2014年12月

    DOI： 10.1016/j.febslet.2014.10.015 　

    ISSN：0014-5793

    eISSN：1873-3468

  27. Decrease in cytosine methylation at CpG island shores and increase in DNA fragmentation during zebrafish aging 国際誌 査読有り

    Nobuyoshi Shimoda, Toshiaki Izawa, Akio Yoshizawa, Hayoto Yokoi, Yutaka Kikuchi, Naohiro Hashimoto

    AGE　36　(1)　103-115　2014年2月

    DOI： 10.1007/s11357-013-9548-5 　

    ISSN：0161-9152

    eISSN：1574-4647

  28. Ocular-Side Lateralization of Adult-Type Chromatophore Precursors: Development of Pigment Asymmetry in Metamorphosing Flounder Larvae 国際誌 査読有り

    Youhei Washio, Masato Aritaki, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution　320B　(3)　151-165　2013年5月

    DOI： 10.1002/jez.b.22491 　

    ISSN：1552-5007

    eISSN：1552-5015

  29. Modular development of the teleost trunk along the dorsoventral axis and zic1/zic4 as selector genes in the dorsal module 国際誌 査読有り

    Toru Kawanishi, Takuya Kaneko, Yuuta Moriyama, Masato Kinoshita, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki, Atsuko Shimada, Hiroyuki Takeda

    Development　140　(7)　1486-1496　2013年4月

    DOI： 10.1242/dev.088567 　

    ISSN：0950-1991

    eISSN：1477-9129

  30. Circadian pacemaker in the suprachiasmatic nuclei of teleost fish revealed by rhythmic period2 expression 国際誌 査読有り

    Nanako Watanabe, Kae Itoh, Makoto Mogi, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Hiroshi Hashimoto, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    General and Comparative Endocrinology　178　(2)　400-407　2012年9月

    DOI： 10.1016/j.ygcen.2012.06.012 　

    ISSN：0016-6480

  31. Continuous illumination through larval development suppresses dopamine synthesis in the suprachiasmatic nucleus, causing activation of alpha-MSH synthesis in the pituitary and abnormal metamorphic skin pigmentation in flounder 国際誌 査読有り

    Kae Itoh, Youhei Washio, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    General and Comparative Endocrinology　176　(2)　215-221　2012年4月

    DOI： 10.1016/j.ygcen.2012.01.017 　

    ISSN：0016-6480

    eISSN：1095-6840

  32. Detection of vitellogenin incorporation into zebrafish oocytes by FITC fluorescence 国際誌 査読有り

    Yohei Matsuda, Yoshie Ito, Hisashi Hashimoto, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Reproductive Biology and Endocrinology　9　45　2011年4月

    DOI： 10.1186/1477-7827-9-45 　

    ISSN：1477-7827

  33. Evolution of Developmental Regulation in the Vertebrate FgfD Subfamily 国際誌 査読有り

    Richard Jovelin, Yi-Lin Yan, Xinjun He, Julian Catchen, Angel Amores, Cristian Canestro, Hayato Yokoi, John H. Postlethwait

    Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution　314B　(1)　33-56　2010年1月

    DOI： 10.1002/jez.b.21307 　

    ISSN：1552-5007

  34. Characterization of Teleost Mdga1 Using a Gene-Trap Approach in Medaka (Oryzias latipes) 国際誌 査読有り

    Shinya Sano, Shigeo Takashima, Hitomi Niwa, Hayato Yokoi, Atsuko Shimada, Alexander Arenz, Joachim Wittbrodt, Hiroyuki Takeda

    Genesis　47　(8)　505-513　2009年8月

    DOI： 10.1002/dvg.20528 　

    ISSN：1526-954X

  35. Consequences of Lineage-Specific Gene Loss on Functional Evolution of Surviving Paralogs: ALDH1A and Retinoic Acid Signaling in Vertebrate Genomes 国際誌 査読有り

    Cristian Canestro, Julian M. Catchen, Adriana Rodriguez-Mari, Hayato Yokoi, John H. Postlethwait

    PLOS Genetics　5　(5)　e1000496-e1000496　2009年5月

    DOI： 10.1371/journal.pgen.1000496 　

    ISSN：1553-7404

  36. Expression profiling of zebrafish sox9 mutants reveals that Sox9 is required for retinal differentiation 国際誌 査読有り

    Hayato Yokoi, Yi-Lin Yan, Michael R. Miller, Ruth A. BreMiller, Julian M. Catchen, Eric A. Johnson, John H. Postlethwait

    Developmental Biology　329　(1)　1-15　2009年5月

    DOI： 10.1016/j.ydbio.2009.01.002 　

    ISSN：0012-1606

  37. Mullerian inhibiting substance is required for germ cell proliferation during early gonadal differentiation in medaka (Oryzias latipes) 国際誌 査読有り

    Eri Shiraishi, Norifumi Yoshinaga, Takeshi Miura, Hayato Yokoi, Yuko Wakamatsu, Shin-Ichi Abe, Takeshi Kitano

    Endocrinology　149　(4)　1813-1819　2008年4月

    DOI： 10.1210/en.2007-1535 　

    ISSN：0013-7227

  38. Maternal-zygotic medaka mutants for fgfr1 reveal its essential role in the migration of the axial mesoderm but not the lateral mesoderm 国際誌 査読有り

    Atsuko Shimada, Mina Yabusaki, Hitomi Niwa, Hayato Yokoi, Kohei Hatta, Daisuke Kobayashi, Hiroyuki Takeda

    Development　135　(2)　281-290　2008年1月

    DOI： 10.1242/dev.011494 　

    ISSN：0950-1991

  39. Evolutionary developmental biology and genomics 国際誌 招待有り 査読有り

    Cristian Cañestro, Hayato Yokoi, John H. Postlethwait

    Nature Reviews Genetics　8　(12)　932-942　2007年12月

    出版者・発行元： Springer Science and Business Media LLC

    DOI： 10.1038/nrg2226 　

    ISSN：1471-0056

    eISSN：1471-0064

  40. Phenotypic analysis of a novel chordin mutant in medaka 国際誌 査読有り

    Shigeo Takashima, Atsuko Shimada, Daisuke Kobayashi, Hayato Yokoi, Takanori Narita, Tomoko Jindo, Takahiro Kage, Tadao Kitagawa, Tetsuaki Kimura, Koshin Sekimizu, Akimitsu Miyake, Davin H. E. Setiamarga, Ryohei Murakami, Sachiko Tsuda, Shinya Ooki, Ken Kakihara, Motoki Hojo, Kiyoshi Naruse, Hiroshi Mitani, Akihiro Shima, Yuji Ishikawa, Kazuo Araki, Yumiko Saga, Hiroyuki Takeda

    Developmental Dynamics　236　(8)　2298-2310　2007年8月

    DOI： 10.1002/dvdy.21245 　

    ISSN：1058-8388

  41. Right-elevated expression of charon is regulated by fluid flow in medaka Kupffer's vesicle 国際誌 査読有り

    Motoki Hojo, Shigeo Takashima, Daisuke Kobayashi, Akira Sumeragi, Atsuko Shimada, Tatsuya Tsukahara, Hayato Yokoi, Takanori Narita, Tomoko Jindo, Takahiro Kage, Tadao Kitagawa, Tetsuaki Kimura, Koshin Sekimizu, Akimitsu Miyake, Davin Setiamarga, Ryohei Murakami, Sachiko Tsuda, Shinya Ooki, Ken Kakihara, Kiyoshi Naruse, Hiroyuki Takeda

    Development Growth & Differentiation　49　(5)　395-405　2007年6月

    DOI： 10.1111/j.1440-169x.2007.00937.x 　

    ISSN：0012-1592

    eISSN：1440-169X

  42. Mutant analyses reveal different functions of fgfr1 in medaka and zebrafish despite conserved ligand-receptor relationships 査読有り

    Hayato Yokoi, Atsuko Shimada, Matthias Carl, Shigeo Takashima, Daisuke Kobayashi, Takanori Narita, Tomoko Jindo, Tetsuaki Kimura, Tadao Kitagawa, Takahiro Kage, Atsushi Sawada, Kiyoshi Naruse, Shuichi Asakawa, Nobuyoshi Shimizu, Hiroshi Mitani, Akihiro Shima, Makiko Tsutsumi, Hiroshi Hori, Joachim Wittbrodt, Yumiko Saga, Yuji Ishikawa, Kazuo Araki, Hiroyuki Takeda

    Developmental Biology　304　(1)　326-337　2007年4月

    DOI： 10.1016/j.ydbio.2006.12.043 　

    ISSN：0012-1606

  43. Identification and lineage tracing of two populations of somatic gonadal precursors in medaka embryos 国際誌 査読有り

    Shuhei Nakamura, Daisuke Kobayashi, Yumiko Aoki, Hayato Yokoi, Youko Ebe, Joachim Wittbrodt, Minoru Tanaka

    Developmental Biology　295　(2)　678-688　2006年7月

    DOI： 10.1016/j.ydbio.2006.03.052 　

    ISSN：0012-1606

  44. Identification of two teleost homologs of the Drosophila sex determination factor, transformer-2 in medaka (Oryzias latipes) 国際誌 査読有り

    E Shiraishi, H Imazato, T Yamamoto, H Yokoi, S Abe, T Kitano

    Mechanisms of Development　121　(7-8)　991-996　2004年7月

    DOI： 10.1016/j.mod.2004.04.013 　

    ISSN：0925-4773

  45. Possible roles of zic1 and zic4, identified within the medaka Double anal fin (Da) locus, in dorsoventral patterning of the trunk-tail region (related to phenotypes of the Da mutant) 国際誌 査読有り

    M Ohtsuka, N Kikuchi, H Yokoi, M Kinoshita, Y Wakamatsu, K Ozato, H Takeda, H Inoko, M Kimura

    Mechanisms of Development　121　(7-8)　873-882　2004年7月

    DOI： 10.1016/j.mod.2004.04.006 　

    ISSN：0925-4773

  46. A mutation in the gene for delta-aminolevulinic acid dehydratase (ALAD) causes hypochromic anemia in the medaka, Oryzias latipes 国際誌 査読有り

    D Sakamoto, H Kudo, K Inohaya, H Yokoi, T Narita, K Naruse, H Mitani, K Araki, A Shima, Y Ishikawa, Y Imai, A Kudo

    Mechanisms of Development　121　(7-8)　747-752　2004年7月

    DOI： 10.1016/j.mod.2004.03.030 　

    ISSN：0925-4773

  47. Cloning and embryonic expression of six wnt genes in the medaka (Oryzias latipes) with special reference to expression of wnt5a in the pectoral fin buds 国際誌 査読有り

    H Yokoi, A Nishimatsu, K Ozato, K Yoda

    Development Growth & Differentiation　45　(1)　51-61　2003年2月

    DOI： 10.1046/j.1440-169X.2003.00674.x 　

    ISSN：0012-1592

  48. sox9 in a teleost fish, medaka (Oryzias latipes): Evidence for diversified function of Sox9 in gonad differentiation 国際誌 査読有り

    H Yokoi, T Kobayashi, M Tanaka, Y Nagahama, Y Wakamatsu, H Takeda, K Araki, KI Morohashi, K Ozato

    Molecular Reproduction and Development　63　(1)　5-16　2002年9月

    DOI： 10.1002/mrd.10169 　

    ISSN：1040-452X

  49. Injection of DNA into the medaka oocyte nucleus. 国際誌 査読有り

    Yokoi H, Ozato K

    Fish Biol. J. MEDAKA　7　53-58　1995年12月

    出版者・発行元： 名古屋大学

    DOI： 10.18999/fisbjm.7.53 　

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MISC 6

  1. 腸内フローラモデルとしてのゼブラフィッシュの有用性 招待有り 査読有り

    大坪 和香子, 横井 勇人

    腸内細菌学雑誌　38　(4)　191-201　2024年10月

    出版者・発行元： 公益財団法人 腸内細菌学会

    DOI： 10.11209/jim.38.191 　

    ISSN： 1343-0882

    eISSN： 1349-8363

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    ゼブラフィッシュは脊椎動物の実験モデルとして，ヒトや動物にも共通する発生や代謝，各種疾患に関連する重要因子の機能解明に寄与してきた．ゼブラフィッシュは腸内フローラの研究モデルとしても注目されており，特定の腸内細菌に対する宿主の免疫や代謝，行動学的応答などが幅広いアプローチで研究されている．特に，糖尿病などの疾患モデルや特定の病原菌による感染症モデルを用いた研究では，創薬のターゲットとなるような重要因子や宿主-腸内細菌相互作用の役割が解明されている．腸内フローラモデルとしてのゼブラフィッシュは，生きた状態で体内の腸内細菌や免疫細胞を観察・モニタリングできるなど，哺乳動物モデルにはない利点がある一方で，飼育水の影響など魚類に特有の留意点も存在する．また，魚類は国内法では実験動物のカテゴリーに含まれないが，国際的に魚類に対してもアニマルウェルフェアへの意識が高まっていることから，配慮を持って取り扱うことが望まれる．本総説では，動物実験モデルとしてのゼブラフィッシュの特色を概説し，ゼブラフィッシュを宿主として利用した最近の腸内フローラ研究の展開を紹介する．また，実験動物代替法としてのゼブラフィッシュ研究の考え方や国内外における魚類モデルの倫理的取り扱いの違いについて解説したうえで，腸内フローラ研究における魚類モデルの有用性と展望を解説する．

  2. 腹腔内注射によりゲノム編集する新技術の開発に向けて －多様な養殖魚への応用を目指して－ 招待有り

    鈴木徹, 岩泉雅樹, 横井勇人

    アグリバイオ　2　(4)　380-381　2018年4月

    出版者・発行元： 北隆館

  3. Fgf受容体から見た遺伝子進化：普遍性と多様性

    横井勇人

    細胞工学　31　(4)　414-415　2012年3月

    出版者・発行元： 学研メディカル秀潤社

  4. FGFレセプターを介したシグナルの機能と多様性

    横井勇人, 武田洋幸

    細胞工学　24　(10)　1055-1059　2005年9月22日

  5. PRODUCTION OF MATERNAL-ZYGOTIC MUTANT MEDAKA BY PGC TRANSPLANTATION INTO INTERSPECIFIC HYBRID(Developmental Biology,Abstracts of papers presented at the 76^<th> Annual Meeting of the Zoological Society of Japan) :

    Shimada Atsuko, Yokoi Hayato, Kanamori Akira, Hori Hiroshi, Kinoshita Masato, Takeda Hiroyuki

    Zoological science　22　(12)　1452-1452　2005年

    出版者・発行元： Zoological Society of Japan

    ISSN： 0289-0003

  6. Heritable malformations induced by X-irradiation and ENU in the medaka :

    YASUDA Takako, YOKOI Hayato, INOHAYA Keiji, SAKAMOTO Daigo, ICHIKAWA Kumi, OTA Munehiro, NARITA Takanori, AOKI Kazuko, SASANUMA Motoe, MATSUMOTO Atsuko, ISHIKAWA Yuji

    Journal of radiation research　42　(4)　518-518　2001年

    出版者・発行元： the Japan Radiation Research Society

    ISSN： 0449-3060

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書籍等出版物 6

  1. 魚の性：オス・メスはどうやって決まるの？

    訳: 横井勇人, 安齋賢 (英語版: Sophia Breslin, John H. Postlethwait, Thomas Desvignes)

    オレゴン大学, 科学とコミックイニシアチブ　2024年

  2. 光が彩るヒラメ・カレイ類養殖 : 生命科学から応用まで = Flatfish aquaculture innovation with light : from life sciences to applications

    横井勇人, 鈴木徹 (編: 水澤寛太, 中村修) 日本水産学会

    恒星社厚生閣　2022年10月

    ISBN: 9784769916871

  3. ゼブラフィッシュ実験ガイド

    横井勇人 (編: 平田普三)

    朝倉書店　2020年11月

    ISBN: 9784254171730

  4. Whole genome duplication and diversification of gene function in teleosts: lessons from Fgfr1, Sox9 and Aldh genes. In "Advances in Comparative Endocrinology, vol IX"

    Yokoi H, Chen Q, Cañestro C, Postlethwait JH, Suzuki T

    Universida de Vigo　2017年12月

    ISBN: 9788481587586

  5. 学生実験テキスト 東北大学農学部生物生産科学科海洋生物科学系

    横井勇人, 鈴木徹

    2013年3月22日

  6. Genome duplication and subfunction partitioning: Sox9 in medaka and other vertebrates. In “Medaka: Model for Organogenesis, Human Disease and Evolution.”

    Yokoi H, Postlethwait JH

    Springer　2011年6月6日

    ISBN: 9784431926900

    詳細を見る 詳細を閉じる

    DOI 10.1007/978-4-431-92691-7_21

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講演・口頭発表等 205

  1. ヒラメ変態の実験モデルとしてのメダカ

    横井勇人

    NBRPメダカユーザーミーティング2026　2026年3月1日

  2. 色素胞分化に関与するgch遺伝子群の魚類特異的な進化と機能の解析

    原凜, 木野創太, 横井勇人

    日本分子生物学会 第48回年会　2025年12月3日

  3. ヒラメの無眼側黒化変異体：ゲノム・遺伝学的解析と候補遺伝子の検討

    横井勇人, 安齋賢, 田川正朋

    日本動物学会 第96回 名古屋大会　2025年9月5日

  4. ヒラメの左右非対称化と眼の移動のメカニズム

    横井勇人

    3Questions - 東北地区編 -　2025年8月25日

  5. ヒラメの左右非対称な体色形成に関わるgch遺伝子群の機能解析

    原凛, 木野創太, 横井勇人

    2025年度 日本動物学会 東北支部大会　2025年7月27日

  6. Gch genes in fish: two in medaka and zebrafish, and five in Japanese flounder 国際会議

    Rin Hara, Sota Kino, Hayato Yokoi

    Joint Annual Meeting of JSCB 77th & JSDB 58th　2025年7月16日

  7. Analysis of the intestinal atresia mutant of medaka (Oryzias latipes)

    Kobayashi D, Urasaki A, Kimura T, Ansai S, Yokoi H, Takashima S, Kitagawa T, Kage T, Narita T, Jindo T, Kinoshita M, Naruse K, Ishikawa Y, Araki K, Saga Y, Takeda H, Yashiro K

    The 57th Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists　2024年6月20日

  8. 異体類のユニークな変態を理解したい 招待有り

    横井勇人

    ミニシンポジウム 東北地方の動物学の現状と将来　2024年2月17日

  9. Genomic and genetic analysis of a flounder mutant defective in left-right asymmetric pigmentation found in an aquaculture hatchery

    Yokoi H, Ansai S, Tagawa M

    The 56th Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists. Sendai International Center　2023年7月23日

  10. ササウシノシタHeteromycteris japonica の参照ゲノム配列決定

    安齋賢, 横井勇人, 鈴木徹, 宇治督

    日本水産学会春季大会　2023年3月30日

  11. ヒラメの無眼側黒化変異体の原因遺伝子の探索

    横井勇人, 安齋賢, 田川正朋

    日本水産学会春季大会　2023年3月30日

  12. 海産軟体動物由来の初代細胞培養の樹立と二枚貝感染ウイルスプロモーターを用いた遺伝子導入系の確立

    Jeongwoong YOON, Wen-Bin GU, 小沼瑞, 小林睦子, 横井勇人, 尾定誠, 長澤一衛

    第46回日本比較内分泌学会大会及びシンポジウム　2022年10月29日

  13. Diverse viral immediate-early genes for genetic engineering, Application in Mollusca

    Jeongwoong Yoon, Wen-Bin Gu, Mizuki Konuma, Mutsuko Kobayashi, Hayato Yokoi, Makoto Osada, Kazue Nagasawa

    Tohoku University – OIST 3rd Joint Workshop on Biodiversity: From Genes and Species to Ecosystem Services and Resilience　2022年10月24日

  14. Flatfish metamorphosis: molecular basis underlying unique morphogenesis leading to asymmetric body plan 招待有り

    Hayato Yokoi, Qiran Chen, Tohru Suzuki

    Tohoku University – OIST 3rd Joint Workshop on Biodiversity: From Genes and Species to Ecosystem Services and Resilience　2022年10月25日

  15. 非モデル生物ヒラメにおける外来遺伝子導入法の検討:メス親魚卵巣への注入法および筋肉組織へのエレクトロポレーション法

    安藤日向, 関根通陽, 岩泉雅樹, 鈴木徹, 横井勇人

    第7回ユニーク会　2022年9月20日

  16. 水産軟体動物細胞で機能するウイルスプロモーターの発見

    Jeongwoong YOON, Wen-Bin GU, 小沼瑞, 小林睦子, 横井勇人, 尾定誠, 長澤一衛

    令和4年度日本水産学会秋季大会　2022年9月5日

  17. ヒラメの色素胞分化に関与する 5 つの gch 遺伝子の比較解析

    木野創太, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2022年3月28日

  18. Transcriptome approach to understand flatfish metamorphosis 招待有り

    Hayato Yokoi

    e-Asia sponsorship workshop: Development and Effective Utilization of Genetic Marker in Non-Experimental Fishes　2022年3月24日

  19. ヒラメの変態とその分子メカニズムを理解したい 招待有り

    横井勇人, 鈴木徹

    2021年日本ベントス学会・日本プランクトン学会合同大会　2021年9月17日

  20. Toward functional analysis in non-model organism, flounder

    Michiharu Sekine, Masaki Iwaizumi, Minato Miyake, Tohru Suzuki, Hayato Yokoi

    第54回 日本発生生物学会年会　2021年6月18日

  21. Retinoic acid is the key regulator of asymmetric pigmentation in the Japanese flounder larvae

    Qiran Chen, Kota Sato, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    日本水産学会春季大会　2021年3月27日

  22. エレクトロポレーション法によるヒラメ筋肉への遺伝子導入の条件検討と応用

    関根通陽, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2021年3月27日

  23. Retinoic acid plays critical role for flounder asymmetrical pigmentation

    Qiran Chen, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    日本動物学会 2020年度東北支部大会　2020年12月6日

  24. エレクトロポレーション法によるヒラメ筋肉への遺伝子導入の検討

    関根通陽, 鈴木徹, 横井勇人

    日本動物学会 2020年度東北支部大会　2020年12月6日

  25. ヒラメにおけるグルココルチコイド受容体 Nr3c1 の局在について

    Naomi Hadisumarto, Makine Tsuneta, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    令和2年度日本水産学会東北支部大会　2020年10月10日

  26. 魚類の色素胞分化に関与する dhfr-like および hdd の GFP ノックインによる解析

    横井勇人, 中村峻也, 安齋賢, 成瀬清, 鈴木徹

    日本動物学会 第91回大会　2020年9月4日

  27. GFP-knock-in medaka revealed the involvement of dhfr-like and hdd in the xanthophore lineage pigment cell differentiation

    Shunya Nakamura, Satoshi Ansai, Kiyoshi Naruse, Tohru Suzuki, Hayato Yokoi

    53rd Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) Co-sponsored by Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2020年5月20日

  28. 魚類の色素胞分化に関与する dhfr-like および hdd の解析

    中村峻也, 安齋賢, 成瀬清, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2020年3月27日

  29. 免疫組織化学によるヒラメ仔魚および稚魚におけるグルココルチコイド受容体(GcR; Nr3c1)の局在観察

    Naomi Hadisumarto, 常田真葵音, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2020年3月29日

  30. エレクトロポーレーションを用いたヒラメ稚魚内の Sox10 陽性色素前駆細胞の in vivo での可視化

    三宅みなと, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2020年3月27日

  31. ササウシノシタ仔魚における Sox10 陽性 - 色素前駆細胞の分布とWntアンタゴニストの影響

    佐藤航大, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2020年3月27日

  32. Critical role of RA signaling during the asymmetric pigmentation of metamorphosing Japanese flounder

    陳其然, 佐藤航大, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2020年3月27日

  33. 雌親魚の腹腔内注射による卵母細胞へのタンパク質の導入

    岩泉雅樹, 横井勇人, 宇治督, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2020年3月27日

  34. Role of gene body methylation revealed by a viable zebrafish DNA methyltransferase mutant

    Norimasa Iwanami, Hayato Yokoi, Shintaro Akiyama, Daichi Shigemizu, Natsuki Araki, Nao Ninomiya, Masaru Matsuda, Tohru Suzuki, Nobuyoshi Shimoda

    第42回日本分子生物学会年会　2019年12月4日

  35. RNA-seqで明らかになった小型異体類、ササウシノシタの仔魚発生・変態期における遺伝子発現プロファイルの変化

    齋藤雄大, 横井勇人, 宇治督, 鈴木徹

    日本動物学会 第90回 大阪大会　2019年9月12日

  36. Characterization of medaka dhfr-like and hdd, genes involved in pigment cell differentiation 国際会議

    Hayato Yokoi, Shunya Nakamura, Satoshi Ansai, Kiyoshi Naruse, Tohru Suzuki

    25th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2019年9月4日

  37. Immunohistochemical localization of glucocorticoid receptor (Nr3c1) in the brain of Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) larva and juvenile 国際会議

    Naomi Hadisumarto, Makine Tsuneta, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    25th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2019年9月4日

  38. Jaw cartilage regulates proliferation of the lateral line sensory organs through Wnt signaling in zebrafish 国際会議

    Miki Iwasaki, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki, Koichi Kawakami, Hironori Wada

    25th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2019年9月4日

  39. De novo methylation of zebrafish angptl1b gene body by Dnmt3bb.2 secures the expression level and integrity of the transcript 国際会議

    Norimasa Iwanami, Hayato Yokoi, Shintaro Akiyama, Daichi Shigemizu, Natsuki Araki, Nao Ninomiya, Masaru Matsuda, Tohru Suzuki, Nobuyoshi Shimoda

    25th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2019年9月4日

  40. ゲノム編集による養殖有用系統作出の効率化に向けた技術展開研究

    岩泉雅樹, 横井勇人, 鈴木徹

    日本ゲノム編集学会 第4回大会　2019年6月3日

  41. dhfr and hdd, genes involved in pigment cell differentiation isolated by transcriptome analysis of flounder metamorphosis 国際会議

    Hayato Yokoi, Shunya Nakamura, Satoshi Ansai, Kiyoshi Naruse, Tohru Suzuki

    52nd Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) Co-sponsored by Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2019年5月15日

  42. Distribution of Sox10-positive chromatophore progenitors and neurons in metamorphosing flounder larvae 国際会議

    Tohru Suzuki, Minato Miyake, Kota Sato, Hayato Yokoi

    52nd Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) Co-sponsored by Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2019年5月15日

  43. 色素胞分化に関与する新規遺伝子の解析

    中村峻也, 安齋賢, 成瀬清, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2019年3月27日

  44. エレクトロポレーションを用いた魚類への遺伝子導入効果の検討

    岩泉雅樹, 関根通陽, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2019年3月27日

  45. トランスクリプトーム解析により明らかになったササウシノシタの変態に伴う遺伝子発現プロファイルの変化

    齋藤雄大, 横井勇人, 宇治督, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2019年3月27日

  46. RNA-Seq screening of up- and down-regulated genes by retinoic acid in metamorphosing flounder larvae

    陳其然, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2019年3月27日

  47. ヒラメの着色型黒化進行に伴う脳と皮膚のtranscriptomeの変化

    齋藤雄大, 篠原怜, 松田直往, 田川正朋, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2019年3月27日

  48. 熱ショック転写因子1の比較生物学的解析およびその局所遺伝子発現誘導方への応用

    坂本丞, 苣田英里子, Cuong Van Pham, 横井勇人, 北野健, 亀井保博

    第41回日本分子生物学会年会　2018年11月30日

  49. ササウシノシタ(Heteromycteris japonica)仔魚における鰭神経回路の発 生と色素前駆細胞の局在

    菊池美希, 齋藤雄大, 遠藤優女, 陳其然, 横井勇人, 宇治督, 鈴木徹

    日本動物学会第89回札幌大会　2018年9月13日

  50. HSF1の比較生物学的解析:IR-LEGOへの展開

    坂本丞, 苣田恵理子, ファム バンクオン, 横井勇人, 北野健, 亀井保博

    日本動物学会第89回札幌大会　2018年9月13日

  51. Genes involved in pigment cell differentiation isolated by gene expression profiling of flounder metamorphosis 国際会議

    Hayato Yokoi, Shunya Nakamura, Laura Cal, Josep Rotllant, Tohru Suzuki

    24th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2018年8月25日

  52. The bamboo sole (Heteromycteris japonica)): A small-sized flatfish suitable as a laboratory model for metamorphic development in the Pleuroneciformes 国際会議

    Tohru Suzuki, Chen Qiran, Hayato Yokoi

    24th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2018年8月25日

  53. 変態期ヒラメの RNA-seq 解析で単離された色素胞分化に関与する遺伝子の解析

    横井勇人, Rotllant Josep, Cal Laura, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2018年3月27日

  54. 魚類における視交叉上核を介した体内時計の制御機構に関する研究

    茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2018年3月27日

  55. ヒラメ下垂体における時計遺伝子と内分泌関連遺伝子の概日リズムに関する解析

    丹羽祥太, 茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2018年3月27日

  56. ヒラメの着色型黒化部に現れる黒色素胞の起源について

    十川麻衣, 松田直往, 田川正朋, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2018年3月27日

  57. Pigmentation genes isolated by transcriptome expression profiling of flounder metamorphosis

    Hayato Yokoi, Laura Cal, Josep Rotllant, Tohru Susuki

    2017年度生命科学系学会合同年次大会、第40回日本分子生物学会年会、第90回日本生化学会大会　2017年12月6日

  58. トラフグの脊椎骨で椎間板様組織を構成する脊索のトランスクリプトーム解析

    鈴木徹, 明珍大志, 横井勇人

    日本動物学会 第88回大会　2017年9月21日

  59. ヒラメの無眼側皮膚に異所的に出現する色素胞の由来について

    十川麻衣, 茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本動物学会 第88回大会　2017年9月21日

  60. Expression profile of RA-related genes during metamorphic development in Japanese flounder 国際会議

    Qiran Chen, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    23rd Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2017年8月30日

  61. Application of electroporation to zebrafish and bubble-eye goldfish for exogenous protein synthesis in the ovary and skeletal muscle 国際会議

    Masaki Iwaizumi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    23rd Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2017年8月30日

  62. ヒラメ変態期の左右非対称な形態形成と細胞分化

    横井勇人, 鈴木徹

    第３回ユニークな少数派実験動物を扱う若手が最先端アプローチを勉強する会　2017年8月25日

  63. Whole genome duplication and diversification of gene function in teleosts: lessons from Fgfr1, Sox9 and Aldh genes 国際会議

    Yokoi H, Chen Q, Cañestro C, Postlethwait JH, Suzuki T

    XI Congress of Iberian Association for Comparative Endocrinology (AIEC)　2017年7月13日

  64. Transcriptome analysis of flatfish metamorphosis identified ocular side biased genes involved in pigmentation 国際会議

    Yokoi H, Kunimasa M, Sakai Y, Suzuki T

    10th European Zebrafish Meeting　2017年7月3日

  65. Rhythmic per2 expression at the suprachiasmatic nucleus of the Japanese flounder, Paralichythys olivaceus, and its implications for circadian clock mechanism 国際会議

    Suzuki T, Mogi M, Yokoi H

    18th International Congress of Comparative Endocrinology (ICCE18)　2017年6月4日

  66. Expression of three clock genes, per1, per2 and cry1 in the caudal fin of Japanese flounder 国際会議

    Mogi M, Yokoi H, Suzuki T

    18th International Congress of Comparative Endocrinology (ICCE18)　2017年6月4日

  67. Expression profiling of Japanese flounder abnormal pigmentation caused by feeding conditions 国際会議

    Minori Kunimasa, Hayato Yokoi, Yoshifumi Sakai, Tadahisa Seikai, Tohru Suzuki

    50th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2017年5月10日

  68. Small-scale culture system of bamboo sole (Heteromycteris japonica), a small-sized species of the Pleuroneciformes, and its metamorphic external asymmetry and pectoral fin loss 国際会議

    Tohru Suzuki, Quiran Chen, Susumu Uji, Hayato Yokoi

    50th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2017年5月10日

  69. 給餌条件により生じるヒラメ体色異常の遺伝子発現プロファイリング解析

    國政実里, 横井勇人, 酒井義文, 青海忠久, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2017年3月26日

  70. ヒラメ末梢組織における時計遺伝子発現の日周リズムの観察とそれらに及ぼすコルチゾル添加の影響の解析

    茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2017年3月26日

  71. エレクトロポレーション法による成体へのプラスミド導入とタンパク合成誘導効果の検討

    岩泉雅樹, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2017年3月26日

  72. ヒラメ再生皮膚に現れる色素前駆細胞と色素胞の分布

    十川麻衣, 茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2017年3月26日

  73. Expression of RA-receptors and RA-catabolic enzymes in Japanese flounder larvae

    陳其然, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2017年3月26日

  74. Expression profiling of flatfish, a weird teleost fish that transforms into an asymmetric body plan 国際会議

    Hayato Yokoi, Minori Kunimasa, Youhei Washio, Xiaoming Wu, Yoshifumi Sakai, Tadahisa Seikai, Tohru Suzuki

    The joint meeting of the 22nd International Congress of Zoology and the 87th Meeting of the Zoological Society of Japan　2016年11月14日

  75. Rhythmicity of clock genes, per2, per1 and cry1, in peripheral tissue in flounder (Paralichthys olivaceus), a marine teleost fish 国際会議

    Makoto Mogi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    The joint meeting of the 22nd International Congress of Zoology and the 87th Meeting of the Zoological Society of Japan　2016年11月14日

  76. Photoentrainment of dairy rhythmicity in the SCN and peripheral tissue in teleost fish, Japanese flounder (Paralichthys olivaceus)

    茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    第23回日本時間生物学会学術大会　2016年11月12日

  77. Embryonic development of circadian rhythmicity in the suprachiasmatic nucleus and pineal gland in flounder (Paralichthys olivaceus), a teleost fish 国際会議

    Makoto Mogi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    International Symposium on Biological Rhythms (JSC international Symposium) “Towards understanding the molecular clockwork”　2016年11月11日

  78. 次世代シーケンサーを用いた遺伝子発現プロファイリングによるヒラメの体色異常に関与する遺伝子の解析

    國政実里, 横井勇人, 青海忠久, 鈴木徹

    平成28年度日本水産学会北海道-東北合同支部大会　2016年10月22日

  79. Expression of RA synthases, aldh1a1, 1a2 and 1a3, in newly hatched, metamorphic larvae and adult of Japanese founder

    陳其然, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2016年9月8日

  80. ヒラメの着色型黒化進行部位における色素前駆細胞の分布

    十川麻衣, 茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2016年9月8日

  81. ブラジル産とユタ産アルテミアを与えたヒラメ変態期仔魚で発現量の異なる遺伝子のRNA-Seqによるスクリーニング

    國政実里, 青海忠久, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会秋季大会　2016年9月8日

  82. DENによるメダカ再生鰭でのvasa, nanosの発現誘導

    Jialing Shen, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2016年9月8日

  83. TALEN法を用いて作製したr-spondin2変異体ゼブラフィッシュの表現型

    岩泉雅樹, 辰見吉昭, 武田萌, 鈴木徹, 横井勇人

    日本ゲノム編集学会第1回大会　2016年9月6日

  84. ヒラメ：左右非対称な眼の移動と色素胞分化

    横井勇人

    第２回ユニークな少数派実験動物を扱う若手が最先端アプローチを勉強する会　2016年8月21日

  85. Transcriptome analysis of flounder metamorphosis 国際会議

    Hayato Yokoi, Minori Kunimasa, Yoshifumi Sakai, Tohru Suzuki

    22nd Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2016年8月20日

  86. 変態期ヒラメの眼球移動に関与する遺伝子の探索

    横井勇人, 酒井義文, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2016年3月26日

  87. Induction of germline-specic and pluripotency factor mRNAs, including vasa and oct4, in medaka somatic cells by diethylnitrosamine

    Shen Jialing, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    日本水産学会春季大会　2016年3月26日

  88. Vitamine A metabolism, revealed by RNA-seq, in the notochord constituting intervertebral tissue

    Khalid Freeha, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    日本水産学会春季大会　2016年3月26日

  89. ヒラメにおける時計遺伝子の日周リズムおよび光同調性の解析

    茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2016年3月26日

  90. エレクトロポレーションによる成体器官への遺伝子導入効果の検討

    岩泉雅樹, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2016年3月26日

  91. ヒラメにおける鱗の発生と色素胞、色素前駆細胞の挙動

    十川麻衣, 茂木淳, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2016年3月26日

  92. ヒラメを用いた魚類概日リズムの光同調機構の解析

    茂木淳, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    BMB2015（第38回日本分子生物学会年会・第88回日本生化学会大会 合同大会）　2015年12月1日

  93. ヒラメにおける視交叉上核、松果体および体細胞の概日リズムの発生

    茂木淳, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2015年9月22日

  94. 変態期ヒラメ頭部で左右非対称に発現する遺伝子の探索

    横井勇人, 久保田直喜, 烏暁明, 酒井義文, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2015年9月22日

  95. Generation of tumor protein p53, tp53, Knockout Medaka Using an oct4-gfp/β-actin-dsred Double Transgenic Line 国際会議

    Jialing Shen, Shinpei Yokota, Hiroyuki Kato, Masato Kinoshita, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    21st Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2015年9月19日

  96. ヒラメ・カレイ類の左右非対称な体色形成と着色異常の発生機構

    鈴木徹, 鷲尾洋平, 烏暁明, 國政実里, 十川麻衣, 横井勇人

    日本動物学会 第86回大会　2015年9月17日

  97. 変態期ヒラメの左右非対称化の分子基盤を解明したい：RNA seqによるアプローチ

    横井勇人

    ユニークな少数派実験動物を扱う若手が最先端アプローチを勉強する会　2015年8月18日

  98. 左ヒラメと右カレイを分ける発生システム

    鷲尾洋平, 横井勇人, 鈴木徹

    日本動物学会 平成27年度東北支部会　2015年8月8日

  99. Effects of light conditions on the development of circadian rhythm in the suprachiasmatic nuclei and pineal in embryos of a marine fish, flounder (Paralichthys olivaceus). 国際会議

    Makoto Mogi, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    48th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2015年6月2日

  100. Post-metamorphic ectopic pigmentation at the ocular side skin in flatfish 国際会議

    Tohru Suzuki, Minori Kunimasa, Xiaoming Wu, Mai Togawa, Susumu Uji, Hayato Yokoi

    48th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2015年6月2日

  101. Transcriptome analysis of asymmetric pigmentation in the flounder metamorphosis 国際会議

    Hayato Yokoi, Minori Kunimasa, Xiaoming Wu, Yoshifumi Sakai, Tohru Suzuki

    48th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2015年6月2日

  102. TALEN 法による2種類の r-spondin 2 変異体ゼブラフィッシュの作製と表現型解析

    武田萌, 辰見吉昭, 松田勝, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2015年3月27日

  103. ヒラメ仔魚の有眼側/無眼側の遺伝子発現プロファイリングで単離された色素胞関連遺伝子

    横井勇人, 國政実里, 烏暁明, 酒井義文, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2015年3月27日

  104. ヒラメ体色形成における dhfr遺伝子の色素前駆細胞マーカーとしての有用性の検討

    國政実里, 烏暁明, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2015年3月27日

  105. ヒラメ・カレイ類の変態後に起こる無眼側着色型黒化の発生過程と色素胞前駆細胞の分布

    鈴木徹, 烏暁明, 國政実里, 横井勇人, 宇治督, 礒島俊実, 田川正朋

    日本水産学会春季大会　2015年3月27日

  106. レチノイン酸によりヒラメ仔魚に発現誘導される遺伝子の次世代シーケンサーを使ったスクリーニング

    烏暁明, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2015年3月27日

  107. 魚類におけるゲノム倍加と種特異的多様化

    横井勇人

    第23回 関西おさかな勉強会　2014年12月5日

  108. ヒラメ視交叉上核での概日リズムの発生

    茂木淳, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    第37回 日本分子生物学会年会　2014年11月25日

  109. Expression profiling of flounder metamorphosis identifies genes involved in pigment cell differentiation. 国際会議

    Hayato Yokoi, Minori Kunimasa, Xiaoming Wu, Youhei Washio, Yoshifumi Sakai, Tohru Suzuki

    20th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2014年9月20日

  110. oct4-gfp Tgメダカ系統の作製と胚発生、鰭再生過程におけるGFP発現の特性解析

    松野林太, 横田晋平, 加藤寛之, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2014年9月19日

  111. ヒラメ視交叉上核及び松果体での概日リズムの発生

    茂木淳, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2014年9月19日

  112. AIDとMBD4による脱メチル化はゼブラフィッシュ胚で起こるのか?

    下田修義, 廣瀬健太朗, 井澤俊明, 横井勇人, 橋本有弘, 菊池裕

    日本遺伝学会第86回大会　2014年9月17日

  113. ヒラメ視交叉上核での分子時計の初期発生

    茂木淳, 宇治督, 横井 勇人, 鈴木徹

    日本動物学会 第85回大会　2014年9月11日

  114. Transcriptome analysis identified genes enriched in ocular- or blind-side of flounder 国際会議

    H. Yokoi, X. Wu, M. Kunimasa, Y. Sakai, T. Suzuki

    11th International Conference on Zebrafish Development and Genetics　2014年6月24日

  115. Identification of ocular- or blind-side enriched genes in flounder metamorphosis 国際会議

    Hayato Yokoi, Xiaoming Wu, Yoshifumi Sakai, Tohru Suzuki

    47th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2014年5月27日

  116. TALEN mediated knockout zebrafish reveals the critical function of r-spondin2 in the fin and vertebral skeletogenesis 国際会議

    Tatsumi Yoshinari, Hayato Yokoi, Masaru Matsuda, Tohru Suzuki

    47th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2014年5月27日

  117. Development of circadian rhythm in the suprachiasmatic nuclei in a marine fish, flounder (Paralichthys olivaceus) embryos 国際会議

    Makoto Mogi, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    47th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2014年5月27日

  118. ゼブラフィッシュ胚でAIDとMBD4がカップルした脱メチル化は起こるのか?

    下田修義, 廣瀬健太朗, 井澤俊明, 横井勇人, 橋本有弘, 菊池裕

    日本エピジェネティクス研究会　2014年5月25日

  119. メダカ系統を使った臆病な性質の定量化の試み

    明珍大志, 橋本寿史, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  120. TALEN 法による甲状腺ホルモン欠損メダカの作出と表現型解析

    阿部雄二, 松田勝, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  121. TALEN 法による r-spondin 2ノックアウトゼブラフィッシュの作製と表現型解析

    辰見吉昭, 武田萌, 松田勝, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  122. ヒラメにおける概日リズムの発生と照明の影響

    茂木淳, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  123. レチノイン酸により誘導される無眼側黒化現象の分子マーカーを用いた解析

    烏暁明, 鷲尾洋平, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  124. ヒラメ仔魚の有眼側と無眼側で非対称に発現する遺伝子の次世代シーケンサーによる解析

    横井勇人, 烏暁明, 酒井義文, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  125. 薬物代謝遺伝子の発現を指標にした汚染状況の生物モニタリング法の開発と津波後干潟域の汚染調査

    鷲尾洋平, 宗像拓也, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2014年3月27日

  126. Flounder eye-sidedness can be experimentally randomized by transient treatment with a Nodal antagonist SB-431542 at somite stage

    Youhei Washio, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    第36回 日本分子生物学会年会　2013年12月3日

  127. 脊椎動物モデルとしての小型魚類と TALEN 革命

    横井勇人, 辰見吉昭, 阿部雄二, 武田萌, 松田勝, 鈴木徹

    日本動物学会 第84回大会　2013年9月26日

  128. ヒラメを対象にした次世代シークエンサーを使った de novo トランスクリプトーム解析

    鈴木徹, 茨木春美, 烏暁明, 酒井義文, 横井勇人

    日本動物学会 第84回大会　2013年9月26日

  129. メダカとゼブラフィッシュで作製した Takifugu-oct4/egfp トランスジェニック

    横田真平, 加藤寛之, 橋本寿史, 横井勇人, 鈴木徹

    日本動物学会 第84回大会　2013年9月26日

  130. ササウシノシタ(真骨魚類、異体類)の実験室内飼育と地域集団間での遺伝的多型解析

    高木雅子, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本動物学会 第84回大会　2013年9月26日

  131. ヒラメの初期仔魚を使った慨日リズムの発生に関する解析

    茂木淳, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本動物学会 第84回大会　2013年9月26日

  132. 次世代シーケンサーを用いたヒラメ脊椎骨の de novo トランスクリプトーム解析

    茨木春美, 烏暁明, 横井勇人, 酒井義文, 鈴木徹

    日本動物学会 第84回大会　2013年9月26日

  133. Analysis of developmental process of molecular clocks at the suprachiasmatic nuclei and pineal gland using flounder Paralichthys olivaceus as a model organism 国際会議

    Makoto Mogi, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    19th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2013年9月20日

  134. lounder eye-sidedness can be experimentally randomized by transient treatment with a Nodal antagonist SB-431542 at somite stage 国際会議

    Youhei Washio, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    19th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2013年9月20日

  135. Transcriptome analyses of flounder metamorphosis left-right asymmetric differentiation 国際会議

    Hayato Yokoi, Xiaoming Wu, Kei Sawada, Yoshifumi Sakai, Tohru Suzuki

    46th annual meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists (JSDB) cosponsored by the Asia-Pacific Developmental Biology Network (APDBN)　2013年5月29日

  136. ヒラメでは変態期に一過的にzic1（double anal fin）の発現が有眼側皮膚で、チューブリンのアセチル化が無眼側皮膚で起こる

    鈴木徹, 鷲尾洋平, 烏暁明, 宇治督, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  137. 胚期に行ったノダル抑制剤処理によって発生するヒラメの眼位逆位

    鷲尾洋平, 福田慎作, 藤浪祐一郎, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  138. ヒラメ仔魚における色素胞前駆細胞の体幹正中部から体表への移動経路と左右差形成

    鷲尾洋平, 藤浪祐一郎, 清水大輔, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  139. レチノイン酸により誘起される脊椎骨異常の進行過程の解析

    烏暁明, 鷲尾洋平, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  140. メダカを使ったチログロブリン-ノックアウトフィッシュ作出の試み

    阿部雄二, 亀井保博, 谷口善仁, 松田勝, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  141. R-spondin の発現解析と TALEN 法によるノックアウトフィッシュの作成

    辰見吉昭, 松田勝, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  142. 変態期ヒラメ仔魚のトランスクリプトーム解析

    横井勇人, 烏暁明, 酒井義文, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  143. ヒラメにおける中枢時計と生体リズムの初期発生

    茂木淳, 渡辺奈々子, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  144. ササウシノシタの受精卵から成魚までの実験室閉鎖系システムでの飼育

    高木雅子, 宇治督, 青海忠久, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  145. oct4-gfp Tg ゼブラフィッシュに由来する胚細胞の培養

    加藤寛之, 横田晋平, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  146. ヒラメ脊椎骨で発現する遺伝子の次世代シークエンス解析によるトランスクリプトーム

    茨木春美, 烏暁明, 鷲尾洋平, 宇治督, 横井勇人, 酒井義文, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2013年3月27日

  147. TALEN によるゲノムへの変異の導入

    鈴木徹, 辰見吉昭, 阿部雄二, 松田勝, 横井勇人

    アクアゲノム研究会　2013年3月26日

  148. 次世代シーケンサーを用いたヒラメのトランスクリプトーム解析の試み

    横井勇人, 茨木春美, 烏暁明, 鷲尾洋平, 宇治督, 酒井義文, 鈴木徹

    アクアゲノム研究会　2013年3月26日

  149. 小型魚類の発生遺伝学と脊椎動物の進化

    横井勇人

    先端農学セミナー　2013年2月15日

  150. Evolutionary Diversification of Duplicated Copies of Pomc in Teleost Fish

    Hayato Yokoi, Mika Bannai, Tohru Suzuki

    第３５回日本分子生物学会年会　2012年12月11日

  151. Expression of Molecular Clock Genes, per2 and bmal1, in the Suprachiasmatic Nuclei and Habenulae of Flounder, Paralichthys Olivaceus, Larvae

    Tohru Suzuki, Makoto Mogi, Nanako Watanabe, Hayato Yokoi

    第３５回日本分子生物学会年会　2012年12月11日

  152. The analyses of gene expression and function of G-protein coupled receptor, lgr4, and its ligand, r-spondin2, using zebrafish embryos 国際会議

    Yoshiaki Tatsumi, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    18th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2012年9月22日

  153. Expression of molecular clock genes, per2 and bmal1, in the suprachiasmatic nuclei and habenulae of flounder, Paralichthys olivaceus, larvae 国際会議

    Tohru Suzuki, Nanako Watanabe, Makoto Mogi, Susumu Uji, Hayato Yokoi

    18th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2012年9月22日

  154. Characterization of thyroid grand development in medaka, and isolation of thyroglobulin mutant using TILLING 国際会議

    Yuji Abe, Yoshihito Taniguchi, Yasuhiro Kamei, Kiyoshi Naruse, Tohru Suzuki, Hayato Yokoi

    18th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2012年9月22日

  155. 遺伝子マーカーを併用したヒラメ稚魚の発生ステージングの検討

    烏暁明, 鷲尾洋平, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会秋季大会　2012年9月14日

  156. ゲノム倍加によって生じた２つの魚類pomc遺伝子の多様性

    横井勇人, 坂内美香, 鈴木徹

    日本進化学会 第14回東京大会　2012年8月21日

  157. ゼブラフィッシュの加齢はゲノミックとエピゲノミックな変化を伴う

    下田修義, 井澤俊明, 吉澤明生, 横井勇人, 菊池裕, 橋本有弘

    日本基礎老化学会　2012年7月26日

  158. Thyroid grand development in medaka; toward a model to study metamorphosis

    Hayato Yokoi, Yuji Abe, Tohru Suzuki

    Joint Meeting of The 45th Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists & The 64th Annual Meeting of the Japan Society for Cell Biology　2012年5月28日

  159. Development of circadian clock in the suprachiasmatic nuclei of teleost fish

    Nanako Watanabe, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Susumu Uji, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    Joint Meeting of The 45th Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists & The 64th Annual Meeting of the Japan Society for Cell Biology　2012年5月28日

  160. Localization of the precursor cells of adult-type chromatophores in the ocular side precedes asymmetric body coloration in metamorphosing flounder larvae

    Youhei Washio, Wu Xiaoming, Hayato Yokoi, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Susumu Uji, Tohru Suzuki

    Joint Meeting of The 45th Annual Meeting of the Japanese Society of Developmental Biologists & The 64th Annual Meeting of the Japan Society for Cell Biology　2012年5月28日

  161. ゼブラフィッシュの加齢はゲノミックとエピゲノミックな変化を伴う

    下田修義, 井澤俊明, 吉澤明生, 横井勇人, 菊池裕, 橋本有弘

    日本エピジェネティクス研究会　2012年5月14日

  162. 時計遺伝子 period2 の魚類視交叉上核における発現

    渡辺奈々子, 伊藤香絵, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2012年3月26日

  163. 仔魚期の 24 時間照明飼育で起こる視床下部・下垂体経路の異常

    伊藤香絵, 鷲尾洋平, 清水大輔, 藤浪祐一郎, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2012年3月26日

  164. メダカにおける甲状腺関連マーカー遺伝子の発現による甲状腺正常発生の観察

    阿部雄二, 鈴木徹, 横井勇人

    日本水産学会春季大会　2012年3月26日

  165. oct4 promoter/gfp-Tg ゼブラフィッシュとメダカを使った細胞の多能性モニター

    加藤寛之, 阿部光太, 宇治督, 橋本寿史, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2012年3月26日

  166. 異体類の成体型色素胞前駆細胞の左右非対称な出現パターン

    鷲尾洋平, 近藤大地, 藤浪祐一郎, 清水大輔, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2012年3月26日

  167. ヒラメ仔魚で左右非対称に発現する遺伝子の単離の試み

    横井勇人, 近藤大地, 藤浪祐一朗, 宇治督, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2012年3月26日

  168. Circadian pacemaker in the suprachiasmatic nuclei of teleost fish revealed by rhythmic per2 expression 国際会議

    Tohru Suzuki, Nanako Watanabe, Hayato Yokoi

    International Symposium: Frontiers in Behavioral Brain Science ~Solving the mystery of sleep~　2012年3月19日

  169. トラフグ脊椎骨形成過程の観察と脊索形成関連および椎骨形成関連遺伝子の発現解析

    鈴木徹, 金子隆政, 宇治督, 横井勇人

    日本分子生物学会年会　2011年12月13日

  170. 魚類におけるゲノム倍加と機能分配

    横井勇人

    アクアゲノム研究会　2011年10月1日

  171. Molecular cloning of period2 from flounder, and analysis of its expression sites in the larval brain and dairy rhythm 国際会議

    Nanako Watanabe, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    17th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2011年9月8日

  172. A trial to dissect the flounder “hentai”: isolation of genes expressed asymmetrically in left or right side in flounder 国際会議

    Hayato Yokoi, Daichi Kondo, Yuichiro Fujinami, Tohru Suzuki

    17th Japanese Medaka and Zebrafish Meeting　2011年9月8日

  173. Isolation of genes enriched asymmetrically in left or right side in flounder

    Hayato Yokoi, Daichi Kondo, Xiaoming Wu, Yuichiro Fujinami, Tohru Suzuki

    44th Annual Meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists　2011年5月18日

  174. Analysis on the relationship between asymmetric expression of pax6 in the habenulae and the Nodal pathway in flounder

    Yohei Washio, Daichi Kondo, Masato Aritaki, Yuichiro Fujinami, Daisuke Shimizu, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    44th Annual Meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists　2011年5月18日

  175. Establishment of a transgenic zebrafish line, carrying fugu oct3/4 promoter-GFP, for monitoring pluripotency of the cells

    Kota Abe, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    44th Annual Meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists　2011年5月18日

  176. Left-sided expression of pitx2 at dorsal diencephalon and gut is maintained throughout larval development in flounders for metamorphic morphogenesis

    Daichi Kondo, Yuichiro Fujinami, Susumu Uji, Hisashi Hashimoto, Hayato Yokoi, Tohru Suzuki

    44th Annual Meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists　2011年5月18日

  177. トラフグの背腹色素パターンの形成過程と背腹で発現強度の異なる色素形成関連遺伝子のスクリーニング

    Wu Xiaoming, 宇治督, 横山芳博, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2011年3月27日

  178. 24時間照明飼育で起こる異体類の体色異常に関する研究

    伊藤香絵, 渡辺奈々子, 鷲尾洋平, 清水大輔, 藤浪祐一郎, 宇治督, 横井勇人, 鈴木徹

    日本水産学会春季大会　2011年3月27日

  179. ヒラメ・カレイ類の左右非対称性を制御するpitx2の変態期再発現と、再発現に関連する左特異的エンハンサー内の核受容体応答配列

    鈴木徹, 近藤大地, ウショーミン, 横井勇人, 宇治督, 橋本寿史

    日本分子生物学会年会 日本生化学会大会 合同大会　2010年12月7日

  180. oct4-GFPトランスジェニックゼブラフィッシュによる細胞の多能性の可視化

    阿部光太, 横井勇人, 橋本寿史, 鈴木徹

    日本水産学会 東北支部大会　2010年11月5日

  181. 左ヒラメと右カレイを振り分ける発生システムについての解析

    鈴木徹, 横井勇人, 宇治督, 橋本寿史, 田中克

    第16回 小型魚類研究集会　2010年9月18日

  182. Evolution of soxE genes in teleost fish revealed by comparative expression analysis and genomics

    Hayato Yokoi, Yi-Lin Yan, Ayano Miyagi, Mark C. Currey, Julian M. Catchen, William A. Cresko, Tohru Suzuki, John H. Postlethwait

    43rd Annual Meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists　2010年6月20日

  183. ゲノム倍加とゼブラフィッシュsox8, sox9の進化

    横井勇人, Yi-Lin Yan, 宮城絢乃, Julian M. Catchen, Mark C. Currey, William A. Cresko, 鈴木徹, John H. Postlethwait

    日本水産学会春季大会　2010年3月26日

  184. トラフグをモデルにした脊椎骨形成過程と脊椎骨発生関連遺伝子の発現解析

    金子隆政, 横井勇人, 鈴木徹, 宇治督

    日本水産学会春季大会　2010年3月26日

  185. 真骨魚類におけるゲノム倍加とSox9の機能分配

    横井勇人

    シンポジウム「仙台・動物発生コロキウム2010」　2010年1月22日

  186. 魚類におけるゲノム倍加と種特異的多様化

    横井勇人

    海洋生物科学系セミナー　2009年10月30日

  187. Sox9の下流遺伝子の探索とゼブラフィッシュsox9a, sox9bへの機能の分配

    横井勇人, Yi-Lin Yan, Michael R. Miller, Julian M. Catchen, Eric A. Johnson、John, H. Postlethwait

    日本水産学会秋季大会　2009年9月30日

  188. Subfunction partitioning of Sox9 in zebrafish revealed by analysis of down-stream target genes.

    Hayato Yokoi, Yi-Lin Yan, Michel Miller, Julian Catchen, Eric Johnson, John Postlethwait

    42nd Annual Meeting for the Japanese Society of Developmental Biologists　2009年5月28日

  189. Subfunction partitioning of Sox9 into sox9a and sox9b revealed by analysis of down-stream targets. 国際会議

    Hayato Yokoi, YiLin Yan, Michael R. Miller, Eric A. Johnson, John H. Postlethwait

    8th International Conference on Zebrafish Development and Genetics　2008年6月25日

  190. Expression profiling of mutant embryos shows that Sox9 is essential for retinal differentiation. 国際会議

    Hayato Yokoi, YiLin Yan, Michael R. Miller, Eric A. Johnson, John H. Postlethwait

    Northwest Regional Developmental Biology Conference　2008年3月12日

  191. Site-specific integration of large DNA fragments into the zebrafish genome using phiC31-integrase. 国際会議

    Michael R. Miller, Hayato Yokoi, Chris Q. Doe, John H. Postlethwait

    2nd GSA Genetic Analysis: Model Organisms to Human Biology Meeting　2008年1月5日

  192. Identifying downstream targets of Sox9 by expression profiling of single and double mutant zebrafish embryos. 国際会議

    Hayato Yokoi, Michael R. Miller, YiLin Yan, Eric A. Johnson, John H. Postlethwait

    7th International Conference on Zebrafish Development and Genetics　2006年6月14日

  193. How did the duplication of zebrafish sox9 coorthologs alter regulatory interactions with downstream targets? 国際会議

    YiLin Yan, XinJun He, Hayato Yokoi, Amy Singer, John H. Postlethwait

    7th International Conference on Zebrafish Development and Genetics　2006年6月14日

  194. Diversified function of the conserved ligand-receptor pair FGF8-FGFR1 is revealed by the medaka fgfr1 mutant headfish. 国際会議

    H. Yokoi, D. Kobayashi, S. Takashima, T. Narita, T. Jindo, T. Kimura, T. Kitagawa, T. Kage, A. Sawada, K. Naruse, S. Asakawa, N. Shimizu, H. Mitani, A. Shima, M. Tsutsumi, H. Hori, Y. Ishikawa, Y. Saga, H. Takeda, K. Araki

    West Coast Zebrafish Meeting　2005年9月9日

  195. Analysis of a medaka mutant headfish, defective in trunk and tail development.

    H. Yokoi, D. Kobayashi, S. Takashima, T. Narita, T. Jindo, T. Kimura, T. Kitagawa, T. Kage, A. Sawada, K. Naruse, S. Asakawa, N. Shimizu, H. Mitani, A. Shima, M. Tsutsumi, H. Hori, Y. Ishikawa, Y. Saga, H. Takeda, K. Araki

    第27回日本分子生物学会年会　2004年12月8日

  196. Analysis of a medaka mutant headfish, defective in trunk and tail development. 国際会議

    H. Yokoi, D. Kobayashi, S. Takashima, T. Narita, T. Jindo, T. Kimura, T. Kitagawa, T. Kage, A. Sawada, K. Naruse, S. Asakawa, N. Shimizu, H. Mitani, A. Shima, M. Tsutsumi, H. Hori, Y. Ishikawa, Y. Saga, H. Takeda, K. Araki

    6th International Conference on Zebrafish Development & Genetics　2004年7月29日

  197. A transposon mediated gene trap approach in medaka. 国際会議

    Clemens Grabher, Alexander Arenz, Hayato Yokoi, Shigeo Takashima, Hiroyuki Takeda, Zoltan Ivics, Joachim Wittbrodt

    6th International Conference on Zebrafish Development & Genetics　2004年7月29日

  198. Medaka temperature-sensitive chordin mutant reveals a novel role in left-right axis determination. 国際会議

    S. Takashima, D. Kobayashi, H. Yokoi, T. Narita, T. Jindo, T. Kage, T. Kitagawa, T. Kimura, K. Sekimizu, R. Murakami, D. Satiamarga, K. Miyake, S. Ooki, K. Kakihara, S. Tsuda, K. Naruse, H. Mitani, A. Shima, Y. Ishikawa, K. Araki, Y. Saga, H. Takeda

    6th International Conference on Zebrafish Development & Genetics　2004年7月29日

  199. メダカ胴尾部欠損変異体headfishの解析

    横井勇人, 小林大介, 高島茂雄, 成田貴則, 神藤智子, 木村哲晃, 北川忠生, 景崇洋, 澤田篤志, 成瀬清, 浅川修一, 清水信義, 三谷啓志, 嶋昭紘, 堤真紀子, 堀寛, 石川裕二, 相賀裕美子, 武田洋幸, 荒木和男

    日本発生生物学会第37回大会　2004年6月4日

  200. Analysis of a medaka mutant, tail-less, defective in trunk and tail development. 国際会議

    H. Yokoi, T. Kage, T. Kitagawa, T. Kimura, D. Kobayashi, A. Sawada, T. Jindo, S. Takashima, T. Narita, K. Naruse, M. Tanaka, H. Mitani, A. Shima, Y. Ishikawa, Y. Saga, H. Takeda, K. Araki

    3rd European Conference on Zebrafish and Medaka Genetics and Development　2003年6月11日

  201. Positional cloning of the alad gene from a hypochromic mutant, who. 国際会議

    D. Sakamoto, K. Inohaya, H. Yokoi, T. Narita, K. Naruse, H. Mitani, A. Shima, Y. Ishikawa, Y. Imai, A. Kudo

    3rd European Conference on Zebrafish and Medaka Genetics and Development　2003年6月11日

  202. メダカ胴尾部欠損変異体tail-lessの解析

    横井勇人, 景崇洋, 北川忠生, 木村哲晃, 小林大介, 澤田篤志, 神藤智子, 高島茂雄, 成田貴則, 成瀬清, 田中実, 三谷啓志, 嶋昭紘, 石川裕二, 相賀裕美子, 武田洋幸, 荒木和男

    第25回日本分子生物学会年会　2002年12月11日

  203. メダカにおけるＸ線及びＥＮＵによる誘発突然変異

    保田隆子, 横井勇人, 猪早敬二, 坂本大悟, 市川久美, 太田宗宏, 成田貴則, 青木一子, 笹沼基恵, 松本厚子, 石川裕二

    日本放射線影響学会第44回大会　2001年10月29日

  204. Conservation and diversification of sox9 expression in medaka.

    H. Yokoi, K. Morohashi, T. Kobayashi, M. Tanaka, Y. Nagahama, Y. Wakamatsu, H. Takeda, K. Araki, K. Ozato

    第7回小型魚類研究集会　2001年8月4日

  205. Evolutional significance of medaka sox9 in gonad and cartilage development. 国際会議

    H. Yokoi, K. Morohashi, T. Kobayashi, M. Tanaka, Y. Nagahama, Y. Wakamatsu, H. Takeda, K. Araki, K. Ozato

    14th International Congress of Developmental Biology　2001年7月8日

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共同研究・競争的資金等の研究課題 20

  1. 異体類変態期の形態形成とホルモンによる制御機構 競争的資金

    2009年9月 ～ 継続中

  2. 小型魚類を用いた魚類変態機構の研究モデル系の構築 競争的資金

    2009年9月 ～ 継続中

  3. 魚類変態に関与する遺伝子の進化ゲノム学的研究 競争的資金

    2009年9月 ～ 継続中

  4. ヒラメの無眼側分化におけるレチノイン酸分解酵素Cyp26と転写因子Sox3の機能解析

    横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (C)

    研究機関：Tohoku University

    2024年4月1日 ～ 2027年3月31日

  5. 新規強制発現系による二枚貝の性分化制御因子の探索と表現型解析

    長澤 一衛, 横井 勇人

    2023年4月1日 ～ 2027年3月31日

  6. 新規強制発現系による二枚貝の性分化制御因子の探索と表現型解析

    長澤 一衛, 横井 勇人

    2023年4月1日 ～ 2027年3月31日

  7. ヒラメの左右非対称な色素胞分化とレチノイン酸シグナルによる制御機構の解析

    横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (C)

    研究機関：Tohoku University

    2021年4月1日 ～ 2024年3月31日

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    ヒラメは有眼側のみで色素胞が分化して左右非対称な体色を呈するが、その分子メカニズムは不明な点が多い。近年の研究により、レチノイン酸（RA）浸漬により無眼側において異所的な色素胞分化が誘導されること、また逆にRA阻害剤を用いた実験で有眼側の色素胞分化が影響されることが示され、色素胞分化おけるRAの重要性が明らかになりつつある。本研究はRAシグナルを伝達する下流遺伝子を単離して、左右非対称な色素胞分化に至る分子メカニズムを明らかにすることを目的とする。またRAシグナルの左右差を生み出す背景として、RA分解酵素の関与が示唆されており、ヒラメの色素胞分化におけるRAシグナルの役割と、左右差が生じるメカニズムの解明を目指して研究を行なっている。 今年度はRAシグナルによる色素胞分化への影響を明らかにするため、RAおよびRA阻害剤の浸漬実験を行い、RT-PCRおよびin situ hybridization実験のためのサンプルを調整した。色素胞分化の評価にはgch２がマーカー遺伝子として使われてきたが、ヒラメでは複数のgch関連遺伝子が見つかったため、色素胞分化における機能の違いを検討した。脊椎動物に共通のgch1と魚類共通のgch2に加えて、異体類に共通のgchとゲノム上でタンデムに配置したgchが存在することが分かった。生体における遺伝子の機能解析を行うため、メダカをモデルとした実験と、ヒラメに外来遺伝子を導入するための方法としてエレクトロポレーションの条件検討を行った。

  8. 貝類造血機構の解明を目指したシングルセル解析と遺伝子改変技術の開発

    長澤 一衛, 横井 勇人, 尾定 誠

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (C)

    研究機関：Tohoku University

    2020年4月1日 ～ 2023年3月31日

    詳細を見る 詳細を閉じる

    本研究では研究期間内において以下の３課題の達成を目指している。課題A. シングルセル解析による貝類の血球分類とマーカー遺伝子の単離、課題B. 貝類の細胞で外来遺伝子を安定発現させるシステムの開発、課題C. GFP遺伝子の導入による貝類血球の可視化である。2021年度は課題A、B、Cに対し下記の成果を得た。 課題Aでは2021年度先進ゲノム支援における情報解析支援を受け、ホタテガイ血球のシングルセル遺伝子発現解析から得られた10種類の細胞集団に対する分化経路解析を実施した。 課題Bでは種々の二枚貝種に対してエレクトロポレーション法およびマイクロインジェクション法の開発を試みた。エレクトロポレーション法の開発には、2021年度に確立したホタテガイの初代培養細胞を用いることで、遺伝子導入に最適な電気条件を見いだした。さらにこの系を使用して二枚貝の細胞で高発現を示す遺伝子プロモーターを複数同定した。またマイクロインジェクション法の開発では、ムラサキイガイやホタテガイの受精卵に対しマイクロインジェクションを実施した。これらの受精卵に合成GFP mRNAまたは発現ベクターを導入したところ、いずれの場合も上記の二枚貝の受精卵内においてGFPの発現を確認した。 課題Cでは血球のみがGFPを発現する遺伝子導入系統の作出を目指しているが、宿主染色体への遺伝子導入効率が極めて低いことが想定された。これを打開するためにレトロトランスポゾンを用いた遺伝子導入に着手した。具体的には海産二枚貝の受精卵に対し、Tol2システムと課題Ｂにおいて見いだした高発現遺伝子プロモーターを用いた発現システムを構築した。今後エレクトロポレーション法を用い、全ての細胞でGFP遺伝子を発現する遺伝子導入二枚貝の作出を目指す。

  9. ヒラメの有眼側特異的色素胞分化および無眼側の分化抑制を制御するメカニズムの解析

    横井 勇人, 鈴木 徹

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (C)

    研究機関：Tohoku University

    2018年4月1日 ～ 2022年3月31日

    詳細を見る 詳細を閉じる

    ヒラメは水産上重要な魚種であるが、種苗生産で出現する体色異常が問題である。本研究は左右非対称に色素胞が分化する分子メカニズムを解析することを目的として行った。ヒラメの有眼側と無眼側で発現の異なる遺伝子を網羅的に単離し、色素胞分化に関与する遺伝子を単離した。これらの遺伝子は黒化異常個体において、黒化部位およびその辺縁部においても発現が観察され、異所的な色素胞分化にも関与することが示唆された。これら遺伝子の機能を解析するために、メダカを実験モデルとし、CRISPR/Cas9を用いたゲノム編集によりGFPをノックインした系統を作成し、遺伝子発現をライブ観察できる実験系を構築できた。

  10. 変態発生制御のシグナル回路と形態異常感受性に関する研究

    鈴木 徹, 酒井 義文, 田川 正朋, 横井 勇人

    2017年4月1日 ～ 2021年3月31日

    詳細を見る 詳細を閉じる

    私達は，これまで異体類の発生とその内分泌調節について検討し，変態に伴う眼球移動や左右非対称な体色形成、骨形成はレチノイン酸(RA)，甲状腺ホルモン，コルチゾル等の内分泌シグナルにより制御され，種苗の形態異常(眼位や体色異常，骨異常)は，これらシグナル回路の攪乱によって発生することを示唆している。本研究では，飼育技術と育種の両面から健苗育成に貢献することを目的として、これまでの研究を発展し，変態を調節するシグナル回路を解明した上で，種苗で頻発する無眼側黒化の発生原因となるシグナル回路の乱れを究明し、さらに無眼側黒化のリスク遺伝子を特定することをめざす。本年度は、ヒラメ・カレイ類の変態期に起こる有眼側限定的な色素胞の分化の発生制御機構を解明することに成功した。すなわち色素胞の前駆細胞は、変態期初期に幹細胞に近い状態で脊髄周辺に発生する。この時、幹細胞は、神経堤細胞のマーカー遺伝子であるSox10を発現し、このSox10の発現誘導にWntシグナルが働くことが明らかになった。脊髄周辺で分化したSox10陽性幹細胞は、脊髄から伸びる神経軸索に沿って背鰭基部に到達し、さらにそこから伸びる神経に沿って左右の皮膚に移動する。幹細胞から色素胞への分化はRA依存的であり、無眼側ではRAの分解酵素であるcyp26bが強発現して色素胞の分化が抑制され、有眼側のみ着色することを明らかにした。RA合成酵素は変態期に腸管上皮で強発現することから、腸管で合成されたRAは血流を介して体全体に拡散して色素胞の分化を誘導するが、無眼側ではcyp26bにより分解されることで色素分化に左右差が発生することが示唆された。 無眼側黒化のリスク遺伝子を特定するための基盤整備として、ヒラメのほぼ全遺伝子について、cDNAの塩基配列を解読し、塩基配列の一塩基多型の情報を得るために複数個体のcDNA塩基配列を取得した。

  11. 魚類の小型・早期成熟化技術の創出－海産魚の発生工学と育種の時短に向けて－

    鈴木 徹, 宇治 督, 横井 勇人

    2019年6月28日 ～ 2020年3月31日

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    私達は、ヒラメ・カレイ類の一種であるササウシノシタが海産魚の中では小型の部類であり、かつ産卵期間が長いことに着目し、海産魚のモデル生物として利用するための研究を進めている．これまでに周年産卵システムや研究用小型飼育システムを立ち上げるなど準備し、現在、養殖魚の種苗生産で問題となっている体色や骨格の形態異常の発生機序について研究を行っている。より分子レベルで踏み込んだ研究に着手するために、発生工学や遺伝学の技術を使いたいと望んでいるが、受精から産卵まで1年と世代サイクルが長いことが障壁となっている。似たように大型の養殖対象魚種はいずれも産卵までの期間が3年と長く、育種が難しいという問題がある。 私達は、上記の研究と並行して、ゼブラフィッシュを使って、成熟雌への腹腔内注射によるゲノム編集技術の開発を行っており、実用化に近づいている。このような背景から、「開発中のゲノム編集技術を使って、ササウシノシタを小型・早期成熟化し」、ゼブラフィッシュ並に便利なモデル生物に改変することを着想し、そのための計画を立案した。本研究は、養殖対象魚の育種を省スペース・時短化するための試験研究としての意義も大きい． 本年度は、3つの課題を検討した。ゲノム編集を進めるためには、ゲノムDNAとcDNAの塩基配列情報の整備が必須であるので、第一の課題では、次世代シーケンサーを使って、ササウシノシタのゲノムDNAと全遺伝子のcDNAの塩基配列の解読を試みた。2番目に、ササウシノシタの雌親魚の腹腔に注射して、プラスミドを卵母細胞に導入できるか検討した。3番目に、ササウシノシタの成長ホルモン遺伝子(GH)を標的としたCRISPR/Cas9プラスミドを作成して、雌親魚の腹腔に注射し、GH遺伝子のノックアウトを試みた。

  12. 親魚への腹腔内注射でゲノム編集する新技術の開発－多様な養殖魚への応用を目指して－

    鈴木 徹, 宇治 督, 横井 勇人, 木下 政人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research

    研究機関：Tohoku University

    2016年4月1日 ～ 2019年3月31日

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    ゲノム編集の養殖魚への応用を目指して、雌親魚への腹腔内注入で、CRISPR/Cas9を卵母細胞に導入してゲノム編集する技術開発を行った。卵黄蛋白質(Vg）は、Vg受容体結合配列 (HLTKTKDL)を使って、卵母細胞に取り込まる。HLTKTKDLを結合することで、腹腔内注射した外来蛋白質が卵母細胞に取り込まれることが分かった。取り込まれた蛋白質は卵黄から細胞質に移行せず、ゲノム編集に利用ためには改良が必要である。成体用脂質キャリアとベクターの複合物を腹腔内注射すると、卵母細胞内でベクターから蛋白質が合成されることが分かった。この方法を使えば、腹腔内注射によるゲノム編集が可能だと考える。

  13. 変態期ヒラメで左右非対称に発現する遺伝子群の単離と甲状腺ホルモン制御機構の解明（国際共同研究強化）

    横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Fund for the Promotion of Joint International Research (Fostering Joint International Research)

    研究機関：Tohoku University

    2016年 ～ 2019年

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    ヒラメやカレイなどの異体類は、変態期に左右対称な仔魚から大規模なリモデリングが起こる。異体類は諸外国においても重要な産業対象種を含み、人工飼育下で生じる異常など日本と同様の問題がある。これら共通の問題に国際共同研究として取り組み、異体類の左右非対称な変態のメカニズムの解析を行った。ヒラメで明らかとなっていた左右非対称化の初期の現象をヨーロッパの異体類ターボットで検証したところ、異なった特徴が見られた。またヒラメで単離された変態に関与する遺伝子のオーソログ（相同遺伝子）を単離して比較解析した。色素胞分化に関与する遺伝子では、進化的に魚類では保存性が高く、四肢動物とは異なった特徴が観察された。

  14. 変態期ヒラメで左右非対称に発現する遺伝子群の単離と甲状腺ホルモン制御機構の解明

    横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (C)

    研究機関：Tohoku University

    2015年4月1日 ～ 2018年3月31日

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    ヒラメ・カレイ類は変態期に眼の移動と左右非対称な色素胞分化により劇的に体制を変化させる。本研究では、次世代シーケンサーを用いた遺伝子発現プロファイル解析により、変態初期の眼上棒状軟骨周辺の微細組織サンプルと、変態後期着底後仔魚の皮膚および筋肉サンプルの2サンプルについて、有眼側と無眼側で発現強度が異なる遺伝子を網羅的に単離した。RT-PCRおよびin situ hybridizationにより、右側特異的な眼上棒状軟骨の退縮に関与する可能性がある遺伝子と、有眼側特異的な色素胞分化に関与する可能性がある遺伝子を解析した。

  15. 次世代技術を活用した異体類体色の左右差形成の分子ネットワークへのアプローチ

    鈴木 徹, 酒井 義文, 横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (B)

    研究機関：Tohoku University

    2014年4月1日 ～ 2017年3月31日

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    ヒラメ・カレイ類は魚類一般と同じく胚発生で外見的に左右対称に発生した後、変態期に片側の眼球が体の反対側に移動し、続いて有眼側皮膚に色素胞が分化することにより体全体が左右非対称を形成する。増養殖用人工種苗では、体色異常（無眼側黒化、有眼側白化）が多発するために、その発生機序の解明が望まれている。本研究では、体色の左右差形成の制御システム、および体色異常の発生機序を解明した。

  16. ゲノミクス情報を活用して性格の個体差を生みだす魚類の性質制御遺伝子を同定する試み

    鈴木 徹, 酒井 義文, 横井 勇人, 横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research

    研究機関：Tohoku University

    2013年4月1日 ～ 2016年3月31日

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    魚類種苗に望まれる形質に、“神経質でない”等の「飼育に適した性質」がある。哺乳類では、脳で働く蛋白質に発生したアミノ酸リピート数の多型、プロモーターに発生したマイクロサテライトの多型が、「性質」に差をもたらすことが知られている。 本研究では、メダカの「人に慣れやすい」d-rR系統と、「神経質な」HNI系統の2系統を使って、ゲノム情報を使ったバイオインフォマティックスにより、魚類の性質関連遺伝子を探索した。その結果、脳機能に関係するセロトニン合成酵素、アンドロゲンレセプター、ドーパミンレセプターが候補遺伝子として抽出され、いずれも系統間で多型性を示すことから性質との相関が示唆された。

  17. ヒラメ変態過程における左右非対称化の分子メカニズムの解明

    横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Young Scientists (B)

    研究機関：Tohoku University

    2012年4月1日 ～ 2015年3月31日

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    ヒラメの変態は左右非対称な眼の移動と色素胞分化を伴う興味深い現象であり、水産増養殖の高効率化の観点からも重要なプロセスである。変態は甲状腺ホルモンにより制御されているが、その分子基盤は不明な点が多い。本研究では次世代シーケンサーにより遺伝子発現プロファイルを解析し、有眼側と無眼側で発現強度の異なる遺伝子を網羅的に同定した。有眼側で強い遺伝子を32、無眼側について7つの遺伝子が得られた。現在、in situ hybridizationにより組織発現を解析し、実際に左右非対称に発現している遺伝子のスクリーニングを進めている。今後は甲状腺ホルモンとの相関についても明らかにしたい。

  18. 左ヒラメに右カレイの謎と健苗育成に向けた稚魚発生システムの解明

    鈴木 徹, 横井 勇人, 宇治 督, 藤浪 祐一郎, 清水 大輔

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Scientific Research (B)

    研究機関：Tohoku University

    2010年4月1日 ～ 2014年3月31日

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    ヒラメ･カレイ類の左右非対称性の制御機構と脊椎骨発生機構を解析した．内臓と間脳の非対称性を制御するNodal経路がヒラメ･カレイ類の左右非対称制御を制御することが証明された．左ヒラメと右カレイを振り分ける発生機構にNodal経路に加え手綱核および視神経束交叉が関与していることが示された． 体色の左右差は、背鰭基部に分布する色素前駆細胞が筋間膜を通って左右両側の皮膚に遊走する間に、有眼側でのみ色素芽細胞に分化することで形成される．レチノイン酸への暴露は、無眼側の色素前駆細胞も色素芽細胞に分化誘導し、無眼側黒化を起こすことが分かった．またレチノイン酸による脊椎骨機構の発生機序が解明された．

  19. 魚類の特性を活用した新しいiPS細胞作製技術の開発

    鈴木 徹, 宇治 督, 横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research

    研究機関：Tohoku University

    2010年 ～ 2012年

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    魚類でiPS細胞を開発できれば、凍結細胞での養殖優良系統の保存技術の開発が期待できる。本研究では、魚類iPS細胞の開発に向けて基盤技術の開発をめざした。Oct4プロモーターでGFPを発現するメダカとゼブラフィシュのトランスジェニックフィシュ系統を作製し、iPS化をGFPの緑色蛍光でモニターできる培養系を開発した。胚細胞にMini-CircleDNAを導入することにより、iPS細胞を開発できる可能性、再生ヒレに出現する多能性細胞を利用することに、効率的に体細胞をiPS細化できる可能性が示唆された。

  20. 発生工学技術を利用した魚類変態機構の分子発生遺伝学的研究

    横井 勇人

    提供機関：Japan Society for the Promotion of Science

    制度名：Grants-in-Aid for Scientific Research

    研究種目：Grant-in-Aid for Young Scientists (B)

    研究機関：Tohoku University

    2010年 ～ 2011年

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    本研究は種苗生産の高効率化のために魚類変態過程の基礎的知見を集積することを目的とし、モデル生物であるメダカを用いて分子発生遺伝学的な研究を行った。生体内の甲状腺ホルモンレベルを生きたままモニターするためのGFPトランスジェニック系統の作出を行った。またメダカをモデルとして魚類の変態過程を解析するにあたり、甲状腺分化や甲状腺ホルモンシグナルに関与する約20の遺伝子についてメダカ胚における発現プロファイルを解析した。

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社会貢献活動 19

  1. ゲノム広場

    2003年11月8日 ～ 2003年11月9日

  2. 京都大学 農学研究科 海洋生物増殖学特別セミナー

    2023年10月23日 ～

  3. 九州大学 農学研究院 国際農業教育研究・推進センター（CPIER）公開セミナー

    2023年3月10日 ～

  4. 岐阜大学 連合創薬医療情報研究科 Developmental Genetics Seminar

    2022年3月14日 ～

  5. バルセロナ大学遺伝学部門セミナー

    2018年6月27日 ～

  6. Keynote Lecture, University of Trento, Purple4 2nd Retreat

    University of Trento, Purple4 2nd Retreat

    2018年6月15日 ～

  7. 名古屋大学大学院 理学研究科 IGERセミナー

    2017年3月16日 ～

  8. バルセロナ大学遺伝学部門セミナー

    2016年7月11日 ～

  9. ハイデルベルグ大学マンハイム医学部セミナー

    2016年6月22日 ～

  10. 親子で楽しむ動物学１５

    2015年8月9日 ～

  11. オレゴン大学神経科学研究所セミナー

    2014年6月30日 ～

  12. 理研ライフサイエンス技術基盤研究センター

    2013年12月10日 ～

  13. 基礎生物学研究所 セミナー

    2009年6月4日 ～

  14. 東京工業大学大学院 生命理工学研究科 セミナー

    2009年6月3日 ～

  15. 東京大学大学院 理学系研究科 特別セミナー

    2009年6月2日 ～

  16. 東北大学大学院 生命科学研究科 GCOEセミナー

    2009年6月1日 ～

  17. 国立成育医療センター研究所 特別セミナー

    2009年5月27日 ～

  18. 国立遺伝学研究所 Biological Symposium

    2009年5月26日 ～

  19. 東海大学医学部 東海医学会セミナー

    2009年5月25日 ～

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その他 7

  1. 蒲生干潟および名取川河口域サンプリング

  2. 蒲生干潟および名取川河口域サンプリング

  3. 変態期ヒラメの左右非対称化プロセスの分子機構について

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    異体類ヒラメが左右対称な仔魚から左右非対称な成体の体制へと転換する変態について、眼球移動と左右非対称な色素細胞分化の分子基盤を明らかにする。

  4. 蒲生干潟および名取川河口域サンプリング

  5. ササウシノシタをモデルとしたヒラメ・カレイ類の変態機構に関する研究

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    ヒラメやナメタカレイ、ホシガレイなどは市場価値が高く、我が国では水産重要魚種として盛んに種苗が生産されているが、人工飼育下では変態不全仔魚が出現して問題となっている。本研究では小型のササウシノシタに着目し、異体類のモデルとして変態に関する基礎的データを蓄積して、大型の商業対象種に還元するシステムの構築を目指す。

  6. メダカをモデルとした魚類の変態に関する研究

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    モデル生物として実験環境が整備されているメダカの特性を活かして、魚類の変態過程を発生遺伝学的に解析する。具体的には、1. メダカにおける変態過程の記載、2. TILLING法による変態関連遺伝子の突然変異体解析を計画している。

  7. ササウシノシタ変態過程の眼球移動と形態転換に関する研究

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    ヒラメ・カレイ類の変態のメカニズムを解明するために、小型で世代時間が短く遺伝学的な解析が可能なササウシノシタに着目して共同研究を行っている。ササウシノシタでは左眼が一日で右体側に移動することが知られており、経時観察により組織移動を詳細に解析する。

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